Агар МакКонки c кристаллвиолетом, NaCl и 0,15% желчных солей HiMedia SM081

HiMedia·Арт.: 0042626·Арт. произв.: SM081

Агар МакКонки c кристаллвиолетом, NaCl и 0,15% желчных солей HiMedia SM081

Name: Агар МакКонки c кристаллвиолетом, NaCl и 0,15% желчных солей HiMedia SM081
Brand: HiMedia
SKU: 0042626
Availability: PreOrder

Под заказпо запросу

Селективная дифференциальная среда Агар МакКонки с кристаллвиолетом, NaCl и 0,15% желчных солей HiMedia SM081. Рекомендуется для выделения и дифференциации колиформных организмов и других кишечных патогенов из клинических и неклинических образцов.

Описание

Область применения

Среда используется для обнаружения и изоляции грамотрицательных микроорганизмов из следующих источников:

клинические образцы (фекалии, моча и другие патологические материалы);
молочные продукты и пищевые товары;
пробы воды;
фармацевтические образцы;
промышленные источники.

Среда рекомендуется для выделения Enterobacteriaceae и родственных им кишечных грамотрицательных бацилл. Согласно рекомендациям USP, данный агар применяется при проведении тестов на микробиологическую чистоту (Microbial Limit Tests).

Специфические сценарии использования включают:

прямой посев проб воды на колиформные бациллы;
исследование пищевых продуктов на наличие возбудителей пищевых отравлений;
изоляция видов Salmonella и Shigella в сырах;
подсчет бактерий coli-aerogenes в фекалиях круп и овец, а также на тушках птицы;
бактериологический подсчет на облученных консервах из куриного фарша;
идентификация бактерий coli-aerogenes при исследовании рода Aeromonas.

Принцип измерения и интерпретация

Агар МакКонки является селективной и дифференциальной средой. Селективность обеспечивается наличием кристаллвиолета и желчных солей, которые подавляют рост большинства видов грамположительных бактерий. Грамотрицательные бактерии обычно хорошо растут на среде и дифференцируются по способности ферментировать лактозу.

Лактозоположительные штаммы: образуют красные или розовые колонии, которые могут быть окружены зоной осаждения желчных солей из-за образования кислоты. Красный цвет обусловлен выработкой кислоты при ферментации лактозы, поглощением нейтрального красного и последующим изменением цвета красителя при падении pH среды ниже 6,8.
Лактозоотрицательные штаммы (например, Shigella и Salmonella): образуют бесцветные прозрачные колонии и обычно не изменяют внешний вид среды.

Роль компонентов:

Пептон, триптон и желатиновый пептон: источники азота, углерода, длинноцепочечных аминокислот и других питательных веществ.
Лактоза: ферментируемый углевод.
Хлорид натрия: поддерживает осмотический баланс.
Желчные соли и кристаллвиолет: селективные агенты, ингибирующие рост грамположительных организмов.
Нейтральный красный: pH-индикатор.

Состав

Состав, г/л:

Компонент	г/л
Желатиновый пептон	17,000
Триптон	1,500
Пептон	1,500
Лактоза	10,000
Желчные соли	1,500
Хлорид натрия	5,000
Нейтральный красный	0,030
Кристаллвиолет	0,001
Агар	15,000
Конечный pH (при 25 °C)	7,1 ± 0,2

Методика подготовки и использования

Среда SM081 поставляется в виде готового стерильного твердого агара в стеклянном флаконе и не требует дополнительной стерилизации.

Перед плавлением слегка ослабьте крышку флакона.
Расплавьте среду, используя предварительно нагретую водяную баню или другой подходящий метод.
После полного расплавления разлейте среду в пробирки (в виде скоса или столбика) или в чашки Петри.
Дайте среде затвердеть.
При использовании чашек Петри проведите асептический посев исследуемого инокулята (50–100 КОЕ) методом штриха, инокуляции или поверхностного размазывания.

Технические характеристики

Внешний вид: стерильный стеклянный флакон, содержащий слегка опалесцирующий агар МакКонки.
Цвет среды: красный с пурпурным оттенком.
Объем среды: 100 мл.
Диапазон pH: 6,90–7,30.
Стерильность: соответствует критериям выпуска.

Культуральные характеристики

Характеристики оцениваются после расплавления среды, разлива в стерильные чашки Петри, инокуляции тест-штаммами и инкубации при 35–37 °C в течение 18–24 часов. Степень восстановления (Recovery) считается 100 % при росте бактерий на соево-казеиновом агаре.

Организм	Посевная доза (КОЕ)	Рост	Восстановление	Цвет колонии
Corynebacterium diphtheriae type gravis	$\ge 10^4$	ингибирован	0 %
Shigella flexneri ATCC 12022	50–100	удовлетворительный/хороший	30–40 %	бесцветные
Salmonella Paratyphi A ATCC 9150	50–100	обильный	$\ge 50$ %	бесцветные
Salmonella Abony NCTC 6017	50–100	обильный	$\ge 50$ %	бесцветные
Proteus hauseri ATCC 13315	50–100	обильный	$\ge 50$ %	бесцветные
Salmonella Typhi ATCC 6539	50–100	обильный	$\ge 50$ %	бесцветные
Staphylococcus epidermidis ATCC 12228	$\ge 10^4$	ингибирован	0 %
Escherichia coli ATCC 8739	50–100	обильный	$\ge 50$ %	розово-красные с осадком желчных солей
Staphylococcus aureus subsp. aureus ATCC 6538	$\ge 10^4$	ингибирован	0 %
Salmonella Paratyphi B ATCC 8759	50–100	обильный	$\ge 50$ %	бесцветные
Escherichia coli ATCC 25922	50–100	обильный	$\ge 50$ %	розово-красные с осадком желчных солей
Klebsiella aerogenes ATCC 13048	50–100	обильный	$\ge 50$ %	розово-красные
Salmonella Typhimurium ATCC 14028	50–100	обильный	$\ge 50$ %	бесцветные
Enterococcus faecalis ATCC 29212	50–100	отсутствует/слабый	$\le 10$ %	бесцветные или бледно-розовые
Salmonella Enteritidis ATCC 13076	50–100	обильный	$\ge 50$ %	бесцветные
Staphylococcus aureus subsp. aureus ATCC 25923	$\ge 10^4$	ингибирован	0 %

Ограничения и требования к эксплуатации

Индивидуальные организмы могут иметь различные требования к росту и демонстрировать вариативность паттернов роста на данной среде.
Для предотвращения конденсации рекомендуется хранить готовые чашки при температуре 24–30 °C.
Поверхность среды при инокуляции должна быть сухой.
Несмотря на селективность среды, для окончательного подтверждения результатов необходимо проведение дополнительных биохимических и серологических тестов.
Рекомендуется проводить валидацию среды для конкретных микроорганизмов, не указанных в сертификате анализа (COA), исходя из уникальных требований пользователя.

Условия хранения и утилизация

Хранение при получении: 15–30 °C.
Срок годности: указан на этикетке.
Утилизация: загрязненные материалы должны быть стерилизованы в автоклаве перед утилизацией. Использованные препараты подлежат автоклавированию и/или сжиганию в соответствии с установленными лабораторными процедурами по обращению с инфекционными материалами.