Сухая питательная среда HiMedia MV173-500G HiVeg агар Мюллера-Хинтона на растительной основе. Рекомендуется для определения чувствительности микроорганизмов, выделенных из клинических образцов, к антимикробным агентам.

Принцип измерения и интерпретация

Агар Мюллера-Хинтона изначально был разработан как прозрачная среда для культивирования патогенных видов Neisseria. В настоящее время среда используется как стандартная тестовая основа для определения чувствительности к антибиотикам.

Среда рекомендована для метода диффузии антимикробных агентов, импрегнированных на бумажных дисках, через агарный гель согласно стандартам CLSI. Выбор данной среды обусловлен следующими факторами:

1. Высокая воспроизводимость результатов от партии к партии.
2. Низкое содержание ингибиторов сульфаниламидов, триметоприма и тетрациклина.
3. Поддержка роста большинства нетребовательных бактериальных патогенов.
4. Наличие обширной базы данных по её применению.

В модификации HiVeg® животные пептоны полностью заменены растительными для исклюпания рисков заражения BSE/TSE (губчатой энцефалопатией). HiVeg®-инфузорат и HiVeg®-кислотный гидролизат обеспечивают организм азотистыми соединениями, углеродом, серой и другими важными питательными веществами. Крахмал выступает в роли защитного коллоида против токсичных веществ и при гидролизе дает декстрозу, служащую источником энергии. Компоненты подобраны таким образом, чтобы обеспечить низкое содержание тимина и тимидина.

Метод Кирби-Бауэра основан на диффузии антимикробных веществ из диска в агар. Диаметры зон задержки роста коррелируют со значениями минимальной ингибирующей концентрации (МИК).

Область применения

Среда используется для анализа чистых культур, выделенных из клинических образцов (моча, кал, кровь и др.).

Ограничения применения

• Не подходит для анализа медленно растущих организмов, анаэробов и капнофилов (длительная инкубация может привести к деградации антибиотика и неточным результатам).
• Требовательные организмы могут не расти на данной среде без добавления крови.
• Плотность инокулята влияет на размер зоны: избыточный посев может уменьшить зону, недостаточный — увеличить.
• Результаты in vitro могут не всегда совпадать с результатами in vivo.

Методика приготовления и проведения анализа

Приготовление среды

1. Суспендируйте 38,0 г порошка в 1000 мл очищенной или дистиллированной воды.
2. Нагрейте до кипения для полного растворения компонентов.
3. Стерилизуйте в автоклаве при температуре 121 °C (давление $\approx$ 0,1 МПа / 15 psi) в течение 15 минут.
4. Охладите до 45–50 °C.
5. Тщательно перемешайте и разлейте по стерильным чашкам Петри.

Процедура тестирования

1. Стандартизированную суспензию микроорганизма наносят посевом на всю поверхность среды.
2. На поверхность среды помещают бумажные диски с определенным количеством антимикробного агента.
3. После инкубации измеряют диаметры зон задержки роста.
4. Результаты интерпретируют путем сравнения со стандартами CLSI.

Технические характеристики

Состав, г/л:

— Эквивалентно инфузорат сердцу говядины.

Общие параметры:

Контроль качества и культуральные характеристики

Тесты на чувствительность к антибиотикам проводятся в соответствии с ISO/TS 16782 и руководствами CLSI/EUCAST.

Условия для специфических патогенов

• Для S. pneumoniae: среда дополняется 5 % конской кровью и 20 мг/л NAD; инкубация при 34–36 °C в течение 18–20 ч в атмосфере 5 % CO₂.
• Для H. influenzae: среда дополняется 5 % конской кровью и 20 мг/л NAD; инкубация при 34–36 °C в течение 18–20 ч в атмосфере 5 % CO₂.

Результаты тестирования стандартных штаммов (инкубация при 30–35 °C в течение 18 ч)