HiMedia MU027-100G Висмут-сульфитный агар

HiMedia·Арт.: 0051028·Арт. произв.: MU027-100G

HiMedia MU027-100G Висмут-сульфитный агар

Name: HiMedia MU027-100G Висмут-сульфитный агар
Brand: HiMedia
SKU: 0051028
Price: 4758 RUB
Availability: PreOrder

Под заказ4 758 руб.

Селективная питательная агаровая среда HiMedia MU027-100G Висмут-сульфитный агар с дозировкой 52,32 г/л для приготовления среды. Среда предназначена для селективного выделения Salmonellae из фармацевтических и других материалов, при этом не должна подвергаться автоклавированию или перегреву, поскольку это снижает селективность.

Описание

Назначение

Висмут-сульфитный агар предназначен для селективного выделения и предварительной идентификации Salmonella Typhi и других Salmonellae из патологического материала, сточных вод, воды, пищевых, фармацевтических и других продуктов. Среда рекомендована для работы с фармацевтическими образцами, а также с фекалиями, мочой, сточными водами и другими материалами.

Среда приготовлена в соответствии с требованиями Фармакопеи США (USP) и представляет собой модификацию среды Вильсона—Блэра.

Состав

Формула скорректирована и стандартизирована для обеспечения заданных параметров эффективности.

Компонент	г/л
Пептон	5,000
HM-пептон B	5,000
Триптон	5,000
Декстроза (глюкоза)	5,000
Фосфат натрия	4,000
Сульфат железа	0,300
Индикатор сульфита висмута	8,000
Бриллиантовый зелёный	0,025
Агар	20,000
Конечный pH при 25 °C	7,6 ± 0,2

HM-пептон B эквивалентен мясному экстракту.

Принцип действия и интерпретация

Бриллиантовый зелёный и сульфит висмута, входящие в состав среды, подавляют рост кишечных грамотрицательных и грамположительных бактерий. Пептон, триптон и HM-пептон B обеспечивают микроорганизмы необходимыми питательными веществами.

Ферментируемым источником углеводов служит декстроза, обеспечивающая энергией усиленный рост микроорганизмов. Фосфаты выполняют функцию буферного компонента. Ионы висмута восстанавливаются до металлического висмута, который формирует металлический блеск вокруг колоний. Сульфит восстанавливается до чёрного сульфида железа с выделением H₂S, что вызывает чёрное окрашивание.

Типичные культуральные признаки:

Salmonella Enteritidis и Salmonella Typhimurium обычно образуют чёрные колонии, напоминающие «глаз кролика», с окружающим металлическим блеском.
Salmonella Paratyphi A образует светло-зелёные колонии.
S. Typhi и S. Arizonae образуют типичные коричневые колонии с металлическим блеском или без него.
Shigella преимущественно подавляется на этой среде; исключения составляют S. flexneri и S. sonnei.
Некоторые виды Salmonella, включая S. Sendai, S. Berta, S. Gallinarum и S. Abortus-equi, также подавляются.
Виды Proteus подавляются, однако отдельные штаммы могут образовывать тусклые зелёные или коричневые колонии с металлическим блеском.

Среда допускает использование большей посевной дозы и сильно загрязнённых образцов по сравнению с другими селективными средами благодаря выраженному ингибирующему действию на грамположительные и колиформные микроорганизмы. Некоторые штаммы Salmonella могут подавляться, поэтому среду не следует использовать как единственную селективную среду для выделения этих микроорганизмов.

Приготовление среды

Суспендируйте 52,32 г сухой среды в 1000 мл очищенной или дистиллированной воды.
Нагрейте суспензию до кипения для полного растворения среды.
Не перегревайте среду и не стерилизуйте её в автоклаве или методом дробной стерилизации: перегрев может разрушить селективность среды.
Перенесите среду на водяную баню, поддерживаемую приблизительно при 50 °C.
Перед разливом в стерильные чашки Петри равномерно распределите осадок сульфита висмута в конечном геле.

Чувствительность среды в значительной степени зависит от равномерного распределения осаждённого сульфита висмута в готовом геле.

Тип образца

Фармацевтические образцы.
Фекалии.
Моча.
Сточные воды.
Вода.
Пищевые продукты.
Патологический материал.
Другие продукты и материалы.

Отбор и обращение с образцами

При обработке фармацевтических продуктов, включая вязкие материалы, применяйте соответствующие методы подготовки образцов, предусмотренные для испытаний на стерильность.

После использования загрязнённые материалы необходимо стерилизовать автоклавированием перед утилизацией.

Предупреждения и меры предосторожности

Перед открытием контейнера прочитайте маркировку.
Используйте защитные перчатки, защитную одежду, средства защиты глаз и лица.
Соблюдайте правила надлежащей микробиологической лабораторной практики при работе с образцами и культурами.
При обращении с образцами соблюдайте стандартные меры предосторожности в соответствии с действующими инструкциями.
Требования безопасности приведены в соответствующих паспортах безопасности.

Ограничения применения

Не автоклавируйте и не перегревайте среду, поскольку это разрушает её селективность.
S. Typhi и S. Arizonae образуют типичные коричневые колонии с металлическим блеском или без него.
Среда обладает высокой селективностью и должна использоваться параллельно с менее селективными средами для выделения микроорганизмов.
У некоторых видов Salmonella типичные чёрные колонии с металлическим блеском наблюдаются рядом с участками внесения большой посевной дозы, тогда как изолированные колонии могут быть зелёными.
Виды Shigella преимущественно подавляются; исключения составляют S. flexneri и S. sonnei.
Некоторые виды Salmonella, включая S. Sendai, S. Berta, S. Gallinarum и S. Abortus-equi, также подавляются.

Контроль качества

Внешний вид: однородный, сыпучий порошок от светло-жёлтого до зеленовато-жёлтого цвета.
Гелеобразование: плотный гель, сопоставимый с 2,0%-ным агаровым гелем.
Цвет и прозрачность приготовленной среды: жёлтая или зеленовато-жёлтая опалесцирующая среда с хлопьевидным осадком.
Реакция: реакция 5,23%-ного водного раствора, pH 7,6 ± 0,2.
Диапазон pH: 7,40–7,80.

Испытание стимулирования роста

Испытание стимулирования роста проводят в соответствии с гармонизированным методом Фармакопеи США (USP).

Культуральную реакцию оценивают после инкубации при 30–35 °C в течение 24–48 ч. Степень восстановления принимают равной 100 % для роста бактерий на соево-казеиновом агаре.

Культуральные характеристики

Культуральные характеристики оценивают после инкубации при 30–35 °C в течение 24–48 ч. Степень восстановления принимают равной 100 % для роста бактерий на соево-казеиновом агаре.

Организм	Посевная доза (КОЕ)	Рост	Значение лота (КОЕ)	Восстановление	Цвет колонии
Salmonella Typhimurium ATCC 14028 (00031*)	50–100	обильный	25–100	≥50 %	чёрный или зеленовато-серый, возможен металлический блеск
Salmonella Abony NCTC 6017 (00029*)	50–100	от хорошего до обильного	25–100	≥50 %	чёрный с металлическим блеском
Дополнительное микробиологическое тестирование
#Klebsiella aerogenes ATCC 13048 (00175*)	50–100	от отсутствующего до слабого	0–10	0–10 %	коричнево-зелёный, зависит от плотности посевной дозы
Enterococcus faecalis ATCC 29212 (00087*)	≥10³	подавленный	0	0 %
Salmonella Enteritidis ATCC 13076 (00030*)	50–100	обильный	25–100	≥50 %	чёрный с металлическим блеском
Salmonella Typhi ATCC 6539	50–100	обильный	50–100	≥50 %	чёрный с металлическим блеском
Shigella flexneri ATCC 12022 (00126*)	50–100	от отсутствующего до слабого	0–10	≤10 %	коричневый
Escherichia coli ATCC 8739 (00012*)	50–100	от отсутствующего до слабого	0–10	≤10 %	от коричневого до зелёного, зависит от плотности посевной дозы