Агар Vogel Johnson в чашке (V.J. агар в чашке) HiMedia MP023-50PT (50 чашек)

Готовая питательная среда Агар Vogel Johnson в чашке (V.J. агар в чашке) HiMedia MP023-50PT (50 чашек) предназначена для селективного выделения коагулазоположительных, ферментирующих маннитол Staphylococcus aureus. Среда применяется для анализа сильно контаминированных клинических, пищевых и молочных проб; каждая чашка диаметром 90 мм содержит 25 мл среды.

Назначение

Среда предназначена для селективного выделения коагулазоположительных стафилококков, ферментирующих маннитол, в том числе Staphylococcus aureus, из сильно контаминированных пищевых и клинических проб.

Состав

Формула скорректирована и стандартизирована для обеспечения заданных рабочих характеристик.

Принцип действия и интерпретация результатов

Staphylococcus aureus — грамположительная сферическая бактерия, часто колонизирующая кожу и слизистые оболочки человека. Она вызывает кожные и раневые инфекции, инфекции мочевыводящих путей, пневмонию и бактериемию; также является распространённой причиной пищевых отравлений и встречается в качестве контаминанта в фармацевтической и косметической продукции (1).

Агар Vogel–Johnson приготовлен по формуле, разработанной Фогелем и Джонсоном (2), и рекомендован для испытания микробиологических пределов согласно фармакопее США (USP) (3). Изначально среда была разработана Зебовицем (4) под названием «теллурит-глициновый агар» для селективного выявления коагулазоположительных стафилококков. В 1960 году Фогель и Джонсон модифицировали среду: добавили феноловый красный в качестве индикатора pH и увеличили содержание маннитола (2). Селективное выделение и дифференциация коагулазоположительных стафилококков на агаре V.J. основаны на ферментации маннитола и восстановлении теллурита (5). Агар V.J. указан в стандартных методах исследования косметической продукции (1, 6), фармацевтических препаратов и пищевых добавок (3). Состав также соответствует рекомендациям USP для испытания микробиологических пределов (3).

Триптон и дрожжевой экстракт обеспечивают среду азотистыми и углеродсодержащими соединениями, витаминами группы B и другими питательными веществами, необходимыми для роста. Гидрофосфат дикалия выполняет буферную функцию. В течение первых 24 часов теллурит, хлорид лития и высокая концентрация глицина почти полностью подавляют рост контаминирующих микроорганизмов. Влияние ингибиторов на S. aureus снижено благодаря присутствию маннитола и глицина.

Коагулазоположительные стафилококки восстанавливают теллурит калия до металлического теллура, образуя чёрные колонии, окружённые жёлтыми зонами. Жёлтая окраска обусловлена ферментацией маннитола: при образовании кислой среды феноловый красный меняет цвет на жёлтый. Если маннитол не ферментируется, жёлтые зоны не образуются. При этом среда вокруг колоний может стать более тёмно-красной, чем обычно, из-за использования пептонов. При длительной инкубации возможно появление чёрных колоний коагулазонегативных микроорганизмов.

Методика применения

1. Асептически нанесите на чашку исследуемую посевную дозу 50–100 КОЕ одним из способов: штриховым посевом, инокуляцией или поверхностным распределением.

Типы проб

• Клинические пробы: гной, моча, материал из ран и с кожи, мазки из носа.
• Пищевые и молочные пробы.

Отбор и обращение с пробами

Для клинических проб соблюдайте установленные рекомендации по обращению с образцами (7, 8). Для пищевых и молочных проб выполняйте отбор и обработку в соответствии с соответствующими рекомендациями (9).

После использования загрязнённые материалы необходимо стерилизовать в автоклаве перед утилизацией.

Предупреждения и меры предосторожности

Среда предназначена для диагностики in vitro и профессионального использования. Перед открытием контейнера прочитайте этикетку. Используйте защитные перчатки, одежду, очки и средства защиты лица. При работе с пробами и культурами соблюдайте правила надлежащей микробиологической практики и стандартные меры предосторожности, установленные для клинических образцов. Дополнительные указания по безопасности приведены в паспортах безопасности.

Ограничения

1. Требования разных микроорганизмов к условиям роста различаются, поэтому характер роста на среде может варьировать.
2. Каждая серия среды проверяется на микроорганизмах, указанных в сертификате анализа. Если требуется исследовать микроорганизм, не указанный в сертификате анализа, рекомендуется предварительно подтвердить пригодность среды с учётом конкретных требований пользователя.
3. Для полной идентификации колоний чистой культуры необходимы дополнительные биохимические исследования.
4. Для уменьшения конденсации рекомендуется хранить чашки при 24–30 °C.

Контроль качества

Культуральные характеристики

Характеристики оценивают после инкубации при 35–37 °C в течение 24–48 ч.

Звёздочкой отмечены соответствующие номера WDCM.

Хранение и срок годности

После получения хранить при 20–30 °C. Использовать до даты окончания срока годности, указанной на этикетке. Рабочие характеристики среды обеспечиваются при использовании в пределах указанного срока годности и хранении при рекомендованной температуре.

Утилизация

Использованные или непригодные препараты необходимо утилизировать безопасным способом — автоклавированием и/или сжиганием. При утилизации инфекционных материалов соблюдайте установленные лабораторные процедуры. Материалы, контактировавшие с клиническими пробами, необходимо обеззараживать и утилизировать в соответствии с действующими лабораторными методами.