Ксилоза-лизин-дезоксихолатный агар HiMedia MH031-500G (уп/500 гр)

HiMedia·Арт.: 0013838·Арт. произв.: MH031-500G

Ксилоза-лизин-дезоксихолатный агар HiMedia MH031-500G (уп/500 гр)

Name: Ксилоза-лизин-дезоксихолатный агар HiMedia MH031-500G (уп/500 гр)
Brand: HiMedia
SKU: 0013838
Price: 10599 RUB
Availability: PreOrder

Под заказ10 599 руб.

Селективная питательная среда Ксилоза-лизин-дезоксихолатный агар HiMedia MH031-500G для изоляции и подсчета Salmonella Typhi и других видов Salmonella. Применяется для микробиологического анализа фармацевтических продуктов в соответствии с гармонизированными методиками USP, EP, BP, JP и IP.

Описание

Область применения

Среда рекомендована для выделения и количественного определения Salmonella Typhi и других видов Salmonella из фармацевтических продуктов. Используется при проведении испытаний на микробиологическую чистоту (microbial limit testing) нестерильных продуктов после предварительного обогащения в бульоне Раппопорта-Вассилиадиса для Salmonella (MH1491) согласно стандартам USP, EP, BP, JP и IP.

Принцип измерения и интерпретация

Среда является селективной и дифференциальной.

Селективные свойства

Дезоксихолат натрия, цитрат аммония-железа и тиосульфат натрия подавляют рост грамположительных микроорганизмов. Экстракт дрожжей обеспечивает необходимые питательные вещества и факторы роста.

Дифференциальные свойства

В состав среды входят ферментируемые сахара: ксилоза, сахароза и лактоза.

Ксилоза: ферментируется почти всеми энтеробактериями, кроме Shigellae.
Лизин: Salmonellae метаболизируют ксилозу и декарбоксилируют лизин, что приводит к защелачиванию среды (pH смещается в щелочную сторону), имитируя реакцию Shigellae.
Лактоза и сахароза: добавлены в избытке для подавления декарбоксилирования лизина непатогенными продуцентами H₂S (за счет образования кислоты).
Индикация H₂S: тиосульфат натрия служит субстратом для фермента тиосульфатредуктазы, который расщепляет его с образованием H₂S. Тиосульфат натрия и цитрат аммония-железа выступают в роли индикаторов H₂S.
Индикатор pH: феноловый красный.

Интерпретация результатов

Кислотная реакция: расщепление сахаров приводит к образованию кислот, из-за чего индикатор меняет цвет с красного на желтый (в колониях и среде при длительной инкубации).
Щелочная реакция и H₂S: при щелочных условиях образование сероводорода приводит к появлению колоний с черными центрами.
Цвет среды: защелачивание возвращает среде красный цвет.

Среда эффективна для скрининга образцов со смешанной флорой энтеропатогенов, так как рост Salmonella и Shigella четко визуализируется даже при обильном росте других видов.

Состав

Состав, г/л:

Компонент	г/л
Ксилоза	3,500
L-лизин	5,000
Лактоза моногидрат	7,500
Сахароза	7,500
Хлорид натрия	5,000
Экстракт дрожжей	3,000
Дезоксихолат натрия	2,500
Тиосульфат натрия	6,800
Цитрат аммония-железа	0,800
Феноловый красный	0,080
Агар	13,500
pH после нагревания (при 25 °C)	7,4 ± 0,2

Приготовление среды

Суспендируйте 54,8 г сухого порошка в 1000 мл очищенной или дистиллированной воды.
Нагревайте при постоянном перемешивании до кипения.
ВНИМАНИЕ: не стерилизовать в автоклаве.
Немедленно перенесите раствор в водяную баню с температурой 50 °C.
После охлаждения разлейте среду в стерильные чашки Петри.

Примечание: не рекомендуется готовить большие объемы среды, так как длительный нагрев может привести к выпадению осадка. Незначительное осаждение является присущим свойством данной среды и не влияет на её функциональные характеристики.

Технические характеристики

Внешний вид: светло-желтый или розовый однородный свободнотекучий порошок.
Желирование: плотный гель, сопоставим с 1,35% агаром.
Цвет и прозрачность готовой среды: красный прозрачный или слегка опалесцирующий гель.
Диапазон pH: 7,20–7,60.
Сертификат: ФСЗ 2009/03709.

Культуральные характеристики

Характеристики учитывают после инкубации при 30–35 °C в течение 18–48 ч. Скорость восстановления считается 100 % при росте бактерий на соево-казеиновом дигест-агаре.

Организм	Посевная доза (КОЕ)	Рост	Значение лота (КОЕ)	Восстановление	Цвет колонии	Температура инкубации
Стимулирующий рост + Индикативные свойства
Salmonella Typhimurium ATCC 14028	50–100	обильный	25–100	$\ge$ 50 %	красные с черными центрами	18–72 ч
Salmonella Abony NCTC 6017	50–100	хороший/обильный	25–100	$\ge$ 50 %	красные с черными центрами	18–72 ч
Дополнительные микробиологические тесты
Escherichia coli ATCC 8739	50–100	удовлетворительный	10–30	20–30 %	желтые	18–72 ч
Escherichia coli ATCC 25922	50–100	удовлетворительный	10–30	20–30 %	желтые	18–72 ч
Proteus hauseri ATCC 13315	50–100	хороший/обильный	25–100	$\ge$ 50 %	серые с черными центрами	18–72 ч
Salmonella Paratyphi A ATCC 9150	50–100	хороший/обильный	25–100	$\ge$ 50 %	красные	18–72 ч
Salmonella Paratyphi B ATCC 8759	50–100	хороший/обильный	25–100	$\ge$ 50 %	красные с черными центрами	18–72 ч
Salmonella Enteritidis ATCC 13076	50–100	хороший/обильный	25–100	$\ge$ 50 %	красные с черными центрами	18–72 ч
Salmonella Typhi ATCC 6539	50–100	хороший/обильный	25–100	$\ge$ 50 %	красные с черными центрами	18–72 ч
Shigella dysenteriae ATCC 13313	50–100	хороший/обильный	25–100	$\ge$ 50 %	красные	18–72 ч
Shigella flexneri ATCC 12022	50–100	удовлетворительный/хороший	15–40	30–40 %	красные	18–72 ч
Shigella sonnei ATCC 25931	50–100	удовлетворительный/хороший	15–40	30–40 %	красные	18–72 ч
Klebsiella aerogenes ATCC 13048	50–100	удовлетворительный	10–30	20–30 %	желтые	18–72 ч
Enterobacter cloacae ATCC 13047	50–100	удовлетворительный	10–30	20–30 %	желтые	18–72 ч
Staphylococcus aureus subsp. aureus ATCC 25923	$\ge 10^3$	подавлен	0	0 %		$\ge 72$ ч
Staphylococcus aureus subsp. aureus ATCC 6538	$\ge 10^3$	подавлен	0	0 %		$\ge 72$ ч
Enterococcus faecalis ATCC 29212	$\ge 10^3$	подавлен	0	0 %		$\ge 72$ ч

Ограничения применения

Различные организмы могут иметь разные требования к росту и демонстрировать вариативность паттернов роста на данной среде.
Некоторые штаммы Proteus могут вызывать изменение цвета с красного на желтый, при этом большинство колоний развивают черные центры, что приводит к ложноположительным реакциям.
Неэнтерические бактерии, такие как Pseudomonas и Providencia, могут образовывать красные колонии.
S. Paratyphi A, S. Choleraesuis, S. Pullorum и S. Gallinarum могут образовывать красные колонии без продукции H₂S, что делает их схожими с видами Shigella.

Условия эксплуатации и хранения

Сухая среда: хранить при температуре +10…+30 °C в плотно закрытом контейнере. Из-за гигроскопичности продукта после вскрытия флакон необходимо плотно закрывать во избежание комкования.
Готовая среда: хранить при температуре +20…+30 °C. Для обеспечения наилучших характеристик рекомендуется хранить чашки Петри при температуре +2…+8 °C.
Хранить в сухом, вентилируемом помещении, защищенном от экстремальных температур и источников возгорания.