HiMedia MCD1078-500G Дифференциальный HiCynth агар для сальмонелл

Дифференциальная агаризованная питательная среда HiMedia MCD1078-500G Дифференциальный HiCynth агар для сальмонелл с конечным pH 7,3 ± 0,2. Применяется для идентификации и дифференциации видов Salmonella среди представителей семейства Enterobacteriaceae, особенно Proteus, в пробах воды и пищевых продуктов.

Назначение

Среда рекомендована для идентификации и дифференциации видов Salmonella среди представителей семейства Enterobacteriaceae, особенно видов Proteus.

Тип изделия: агар
Масса: 500 г

Тип исследуемых образцов: пробы воды, пробы пищевых продуктов.

Состав

Формула скорректирована и стандартизирована в соответствии с установленными эксплуатационными параметрами. Пептоны являются химически определёнными.

* Химически определённые пептоны.

Методика приготовления среды

1. Суспендируйте 10 г жидкой части B в 1000 мл очищенной или дистиллированной воды.
2. Добавьте 25 г части A.
3. Тщательно перемешайте и нагревайте до кипения до полного растворения среды.
4. Не автоклавируйте.
5. Охладите среду до 45–50 °C.
6. Тщательно перемешайте и разлейте среду в стерильные чашки Петри.

Принцип дифференциации и интерпретация результатов

Дифференциальный агар для Salmonella представляет собой небольшую модификацию исходной формулы Rambach, предназначенную для дифференциации видов Salmonella от Proteus и других кишечных бактерий.

Образование кислоты из пропиленгликоля является характерным признаком видов Salmonella и используется в составе среды. Многие среды, включая агар SS HiCynth™ и агар XLD HiCynth™, предназначенные для идентификации и дифференциации видов Salmonella, основаны на ферментации лактозы и образовании сероводорода. В дифференциальном агаре HiCynth™ для Salmonella животные и растительные пептоны заменены химически определёнными пептонами, что позволяет избежать рисков, связанных с использованием пептонов животного происхождения, включая риски BSE/TSE.

Пептоны HiCynth™ № 2 и HiCynth™ № 5 обеспечивают среду углеродистыми и азотистыми соединениями, аминокислотами с длинной цепью, витаминами и другими факторами роста, поддерживающими обильный рост бактерий. Синтетическое моющее вещество № I ингибирует грамположительные микроорганизмы, придавая среде селективность в отношении кишечных микроорганизмов.

Индикатор B. C. окрашивается в розовый цвет в присутствии кислоты, образующейся из пропиленгликоля. Способность к ферментации лактозы определяется с помощью индикатора, выявляющего присутствие фермента β-галактозидазы. Бактерии, ферментирующие лактозу и продуцирующие β-галактозидазу, образуют колонии сине-фиолетового цвета.

Salmonella образует кислоту из пропиленгликоля; при взаимодействии кислоты с индикатором pH формируются типичные розово-красные колонии. Другие кишечные грамотрицательные бактерии образуют бесцветные колонии.

Salmonella Typhimurium и Salmonella Enteritidis образуют колонии от розового до красного цвета. Перед посевом образец следует обогатить в подходящем селективном обогатительном бульоне. Обогащённую культуру затем инокулируют на дифференциальный агар для Salmonella и инкубируют при 35–37 °C в течение 24–48 ч.

Техническое отличие методики

В отличие от сред, дифференциация в которых основана преимущественно на ферментации лактозы и образовании сероводорода, рассматриваемая среда использует образование кислоты из пропиленгликоля; кроме того, животные и растительные пептоны заменены химически определёнными пептонами.

Пробоподготовка и обращение с образцами

Для пищевых продуктов используйте соответствующие методики отбора и обработки образцов согласно действующим руководствам.

Для проб воды используйте соответствующие методики отбора и обработки образцов согласно действующим руководствам и местным нормативным требованиям.

Загрязнённые материалы после использования необходимо стерилизовать автоклавированием перед утилизацией.

Ограничения применения

1. Среда селективна для Salmonella и может не поддерживать рост других микроорганизмов.
2. Большинство штаммов Salmonella образуют розово-красные колонии, однако отдельные штаммы могут формировать бесцветные колонии.
3. Из-за различий в пищевых потребностях некоторые штаммы могут расти слабо.
4. Окончательное подтверждение принадлежности подозрительных колоний необходимо выполнять серологическими и биохимическими тестами.

Предупреждения и меры предосторожности

• Перед открыванием контейнера прочитайте маркировку.
• При работе используйте защитные перчатки, защитную одежду, средства защиты глаз и лица.
• Соблюдайте правила надлежащей микробиологической лабораторной практики при работе с образцами и культурами.
• При обращении с клиническими образцами соблюдайте стандартные меры предосторожности в соответствии с установленными руководствами.
• Требования безопасности приведены в соответствующих паспортах безопасности.

Контроль качества

Внешний вид

Внешний вид части A: однородный, легко сыпучий порошок от светло-жёлтого до светло-розового цвета.
Внешний вид части B: бесцветный вязкий раствор.

Гелеобразование

Гель плотный, сопоставимый с 1,2%-ным агаровым гелем.

Цвет и прозрачность приготовленной среды

В чашках Петри образуется прозрачный или слегка опалесцирующий гель светло-оранжевого цвета.

Реакция

Условия определения: водный раствор части A с концентрацией 2,5 % масс./об. при 25 °C.
pH: 7,3 ± 0,2.

Диапазон pH

Диапазон pH: 7,10–7,50.

Культуральные характеристики

Культуральные характеристики определяют после инкубации при 35–37 °C в течение 24–48 ч.