HiMedia MCD031-500G XLD HiCynth агар (ксилозо-лизин-дезоксихолатный)

HiMedia·Арт.: 0050272·Арт. произв.: MCD031-500G

HiMedia MCD031-500G XLD HiCynth агар (ксилозо-лизин-дезоксихолатный)

Name: HiMedia MCD031-500G XLD HiCynth агар (ксилозо-лизин-дезоксихолатный)
Brand: HiMedia
SKU: 0050272
Price: 12189 RUB
Availability: PreOrder

Под заказ12 189 руб.

Селективная дифференциальная среда HiMedia MCD031-500G XLD HiCynth агар (ксилозо-лизин-дезоксихолатный) для изоляции и подсчета Salmonella Typhi и других видов Salmonella. Применяется для микробиологического анализа проб пищевых продуктов, молочных продуктов и воды; характеризуется повышенной селективностью и чувствительностью по сравнению с агаром SS или EMB.

Описание

Принцип измерения и интерпретация

XLD HiCynth™ агар представляет собой химически определенную среду, не содержащую животных и растительных пептонов. Среда является одновременно селективной и дифференциальной.

Селективность

В качестве селективного агента используется синтетический детергент № III, который подавляет рост грамположительных микроорганизмов. Состав среды препятствует избыточному разрастанию других организмов, которые могли бы перекрыть рост Salmonella и Shigella.

Дифференциация

Источники углеводов: Ксилоза, лактоза и сахароза служат ферментируемыми углеводами. Ксилоза включена в состав, так как она не ферментируется Shigella, но практически всеми представителями семейства Enterobacteriaceae, что позволяет дифференцировать виды Shigella.
Индикатор pH: Расщепление углеводов до кислот вызывает изменение цвета индикатора фенолового красного на желтый.
Роль лизина: Лизин используется для дифференциации группы Salmonella от непатогенных организмов. Salmonella быстро ферментирует ксилозу, после чего фермент лизин-декарбоксилаза расщепляет лизин с образованием аминов. Это приводит к возврату среды в щелочную реакцию (pH повышается), что проявляется красным окрашиванием вокруг колоний. Чтобы предотвратить эту реакцию у лизин-положительных колиформ, в среду добавлены лактоза и сахароза для избыточного производства кислоты.
Индикатор H₂S: Система из тиосульфата натрия и цитрата аммония-железа(III) позволяет визуализировать выделение сероводорода, что приводит к образованию колоний с черными центрами. Непатогенные продуценты H₂S не декарбоксилируют лизин, поэтому кислая реакция препятствует почернению их колоний.

Область применения

Среда рекомендуется для анализа следующих типов образцов:

Пищевые продукты.
Молочные продукты.
Пробы воды.

Для образцов с подозрением на наличие кишечных патогенов в смеси с другой флорой рекомендуется предварительное обогащение в модифицированной полужидкой среде RV (M1482).

Методика приготовления

Суспендировать 56,68 г порошка в 1000 мл очищенной или дистиллированной воды.
Нагревать при постоянном перемешивании до кипения.
Важно: Не автоклавировать и не перегревать среду.
Немедленно перенести в водяную баню при температуре 50 °C.
После охлаждения разлить по стерильным чашкам Петри.

Примечание: Не рекомендуется готовить большие объемы среды, требующие длительного нагрева, так как это может привести к выпадению осадка. Незначительный осадок является присущим свойством среды и не влияет на её функциональные характеристики.

Технические характеристики

Параметр	Значение
Происхождение	Химически определенная (HiCynth™)
Тип продукта	HiCynth™
Физическая форма	Порошок
Тип упаковки	ПНД (HDPE)
Вес	500 г
Внешний вид	Светло-желтый или розовый гомогенный свободный порошок
Желирование	Плотное, сопоставимо с 1,5% агаровым гелем
Цвет и прозрачность готовой среды	Красный прозрачный или слегка опалесцирующий гель
Реакция (pH 5,67% р-ра при 25 °C)	7,4 ± 0,2
Диапазон pH	7,20–7,60

Состав (г/л)

Компонент	г/л
HiCynth™ Пептон №5 (химически определенный)	4,000
L-Лизин	5,000
Лактоза	7,500
Сахароза	7,500
Ксилоза	3,500
Натрия хлорид	5,000
Синтетический детергент № III	1,500
Натрия тиосульфат	6,800
Цитрат аммония-железа(III)	0,800
Феноловый красный	0,080
Агар	15,000
Конечный pH (при 25 °C)	7,4 ± 0,2

Культуральные характеристики

Инкубация проводилась при 35–37 °C. Скорость восстановления считается 100 % для роста бактерий на агаре сое-триптоном.

Организм	Посевная доза (КОЕ)	Рост	Значение серии (КОЕ)	Восстановление	Цвет колонии	Период
Salmonella Typhimurium ATCC 14028	50–100	обильный	25–100	$\ge$ 50 %	красные с черными центрами	18–72 ч
Salmonella Abony NCTC 6017	50–100	хороший-обильный	25–100	$\ge$ 50 %	красные с черными центрами	18–72 ч
Escherichia coli ATCC 8739	50–100	удовлетворительный	10–30	20–30 %	желтые	18–72 ч
Escherichia coli ATCC 25922	50–100	удовлетворительный	10–30	20–30 %	желтые	18–72 ч
Escherichia coli NCTC 9002	50–100	удовлетворительный	10–30	20–30 %	желтые	18–72 ч
Proteus vulgaris ATCC 13315	50–100	хороший-обильный	25–100	$\ge$ 50 %	серые с черными центрами	18–72 ч
Salmonella Paratyphi A ATCC 9150	50–100	хороший-обильный	25–100	$\ge$ 50 %	красные	18–72 ч
Salmonella Paratyphi B ATCC 8759	50–100	хороший-обильный	25–100	$\ge$ 50 %	красные с черными центрами	18–72 ч
Salmonella Enteritidis ATCC 13076	50–100	хороший-обильный	25–100	$\ge$ 50 %	красные с черными центрами	18–72 ч
Salmonella Typhi ATCC 6539	50–100	хороший-обильный	25–100	$\ge$ 50 %	красные с черными центрами	18–72 ч
Shigella dysenteriae ATCC 13313	50–100	хороший-обильный	25–100	$\ge$ 50 %	красные	18–72 ч
Shigella flexneri ATCC 12022	50–100	удовлетворительный-хороший	15–40	30–40 %	красные	18–72 ч
Shigella sonnei ATCC 25931	50–100	удовлетворительный-хороший	15–40	30–40 %	красные	18–72 ч
Klebsiella aerogenes ATCC 13048	50–100	удовлетворительный	10–30	20–30 %	желтые	18–72 ч
Enterobacter cloacae ATCC 13047	50–100	удовлетворительный	10–30	20–30 %	желтые	18–72 ч
Staphylococcus aureus subsp. aureus ATCC 25923	$\ge 10^4$	подавлен	0	0 %	—	$\ge 72$ ч
Staphylococcus aureus subsp. aureus ATCC 6538	$\ge 10^4$	подавлен	0	0 %	—	$\ge 72$ ч
Enterococcus faecalis ATCC 29212	$\ge 10^4$	подавлен	0	0 %	—	$\ge 72$ ч

Ограничения и особенности применения

Некоторые штаммы Proteus могут давать окраску от красной до желтой, при этом большинство колоний имеют черные центры, что приводит к ложноположительным реакциям.
Неэнтерические бактерии, такие как Pseudomonas и Providencia, могут образовывать красные колонии.
S. Paratyphi A, S. Choleraesuis, S. Pullorum и S. Gallinarum могут образовывать красные колонии без продукции H₂S, что делает их схожими с видами Shigella.
Для окончательной идентификации требуется дополнительное биохимическое или серологическое тестирование.
В зависимости от потребностей в питании некоторые виды могут демонстрировать различные паттерны роста.

Условия эксплуатации и хранения

Хранение порошка: в плотно закрытом контейнере при температуре 10–30 °C в сухом вентилируемом помещении, вдали от источников возгорания. Из-за гигроскопичности продукта необходимо плотно закрывать крышку для предотвращения образования комков.
Хранение готовой среды: при температуре 20–30 °C.
Срок годности: использовать до даты, указанной на этикетке.

Меры предосторожности и утилизация

При работе со средой и образцами следует соблюдать стандартные правила микробиологической безопасности: использовать защитные перчатки, одежду и средства защиты глаз/лица.

Утилизация: Загрязненные материалы и остатки среды должны быть стерилизованы в автоклаве или подвергнуты инсинерации перед утилизацией в соответствии с установленными лабораторными процедурами.