HiMedia MCD031-100G XLD HiCynth агар (ксилозо-лизин-дезоксихолатный)

HiMedia·Арт.: 0050271·Арт. произв.: MCD031-100G

HiMedia MCD031-100G XLD HiCynth агар (ксилозо-лизин-дезоксихолатный)

Name: HiMedia MCD031-100G XLD HiCynth агар (ксилозо-лизин-дезоксихолатный)
Brand: HiMedia
SKU: 0050271
Price: 4658 RUB
Availability: PreOrder

Под заказ4 658 руб.

Селективная дифференциальная среда HiMedia MCD031-100G XLD HiCynth агар (ксилозо-лизин-дезоксихолатный) для выделения и подсчета Salmonella Typhi и других видов Salmonella. Применяется для анализа проб пищевых продуктов, молочной продукции и воды; характеризуется повышенной селективностью и чувствительностью по сравнению с агаром SS HiCynth™ (MCD108) и агаром EMB (M022).

Описание

Принцип измерения и интерпретация

XLD HiCynth™ агар представляет собой химически определенную среду, не содержащую пептонов животного или растительного происхождения. Среда предназначена для идентификации семейства Enterobacteriaceae и дифференциации кишечных патогенов.

Механизм дифференциации:

Источники питания: HiCynth™ Peptone No.5 обеспечивает необходимые азот и витамины.
Углеводы: Ксилоза, лактоза и сахароза служат источниками ферментируемых углеводов. Ксилоза включена специально, так как она не ферментируется Shigella, но практически всеми другими энтериками, что позволяет дифференцировать виды Shigella.
Лизин: Используется для отличия группы Salmonella от непатогенных микроорганизмов. Salmonella быстро ферментирует ксилозу, после чего фермент лизин-декарбоксилаза расщепляет лизин с образованием аминов, что возвращает pH среды к щелочному значению (имитируя реакцию Shigella).
Индикация pH: Лактоза и сахароза добавлены для того, чтобы лизин-положительные колиформы вырабатывали избыток кислоты. Расщепление углеводов до кислоты вызывает изменение цвета индикатора фенолового красного на жёлтый. Бактерии, декарбоксилирующие лизин до кадаверина, характеризуются появлением красного окрашивания вокруг колоний из-за повышения pH.
Индикация H₂S: Система из тиосульфата натрия и цитрата аммония-железа(III) позволяет визуализировать выделение сероводорода, что приводит к формированию колоний с чёрными центрами. Непатогенные продуценты H₂S не декарбоксилируют лизин, поэтому кислая реакция препятствует почернению колоний.

Селективность: В качестве селективного агента используется синтетический детергент № III, который подавляет рост грамположительных микроорганизмов.

Область применения

Среда рекомендуется для анализа следующих типов образцов:

Пищевые продукты и молочная продукция.
Пробы воды.

Методика приготовления

Суспендировать 56,68 г порошка в 1000 мл очищенной или дистиллированной воды.
Нагревать при постоянном перемешивании до кипения. ЗАПРЕЩЕНО автоклавировать или перегревать.
Немедленно перенести в водяную баню при температуре 50 °C.
После охлаждения разлить по стерильным чашкам Петри.

Примечание: Не рекомендуется готовить большие объемы среды, требующие длительного нагрева, во избежание выпадения осадка. Незначительное осаждение является внутренним свойством среды и не влияет на её эффективность.

Технические характеристики

Параметр	Значение
Происхождение	Химически определенная (HiCynth™)
Тип продукта	HiCynth™
Физическая форма	Порошок
Тип упаковки	ПНД (HDPE)
Вес	100 г
Внешний вид	Светло-жёлтый или розовый гомогенный свободнотекучий порошок
Желирование	Плотный гель, сопоставим с 1,5% агаром
Цвет и прозрачность готовой среды	Красный прозрачный или слегка опалесцирующий гель
Реакция (pH 5,67% р-ра при 25 °C)	7,4 ± 0,2
Диапазон pH	7,20–7,60

Состав, г/л:

Компонент	г/л
HiCynth™ Peptone No.5*	4,000
L-Лизин	5,000
Лактоза	7,500
Сахароза	7,500
Ксилоза	3,500
Хлорид натрия	5,000
Синтетический детергент № III	1,500
Тиосульфат натрия	6,800
Цитрат аммония-железа(III)	0,800
Феноловый красный	0,080
Агар	15,000
Конечный pH (при 25 °C)	7,4 ± 0,2

*Химически определенные пептоны.

Культуральные характеристики

Инкубация проводилась при температуре 35–37 °C. Скорость восстановления считается 100 % при росте бактерий на агаре соево-триптонном.

Организм	Посевная доза (КОЕ)	Рост	Значение серии (КОЕ)	Восстановление	Цвет колонии	Период
Salmonella Typhimurium ATCC 14028	50–100	обильный	25–100	$\ge$ 50 %	красные с чёрными центрами	18–72 ч
Salmonella Abony NCTC 6017	50–100	хороший/обильный	25–100	$\ge$ 50 %	красные с чёрными центрами	18–72 ч
Escherichia coli ATCC 8739	50–100	удовлетворительный	10–30	20–30 %	жёлтые	18–72 ч
Escherichia coli ATCC 25922	50–100	удовлетворительный	10–30	20–30 %	жёлтые	18–72 ч
Escherichia coli NCTC 9002	50–100	удовлетворительный	10–30	20–30 %	жёлтые	18–72 ч
Proteus vulgaris ATCC 13315	50–100	хороший/обильный	25–100	$\ge$ 50 %	серые с чёрными центрами	18–72 ч
Salmonella Paratyphi A ATCC 9150	50–100	хороший/обильный	25–100	$\ge$ 50 %	красные	18–72 ч
Salmonella Paratyphi B ATCC 8759	50–100	хороший/обильный	25–100	$\ge$ 50 %	красные с чёрными центрами	18–72 ч
Salmonella Enteritidis ATCC 13076	50–100	хороший/обильный	25–100	$\ge$ 50 %	красные с чёрными центрами	18–72 ч
Salmonella Typhi ATCC 6539	50–100	хороший/обильный	25–100	$\ge$ 50 %	красные с чёрными центрами	18–72 ч
Shigella dysenteriae ATCC 13313	50–100	хороший/обильный	25–100	$\ge$ 50 %	красные	18–72 ч
Shigella flexneri ATCC 12022	50–100	удовлетворительный/хороший	15–40	30–40 %	красные	18–72 ч
Shigella sonnei ATCC 25931	50–100	удовлетворительный/хороший	15–40	30–40 %	красные	18–72 ч
Klebsiella aerogenes ATCC 13048	50–100	удовлетворительный	10–30	20–30 %	жёлтые	18–72 ч
Enterobacter cloacae ATCC 13047	50–100	удовлетворительный	10–30	20–30 %	жёлтые	18–72 ч
Staphylococcus aureus subsp. aureus ATCC 25923	$\ge 10^4$	подавлен	0	0 %	—	$\ge 72$ ч
Staphylococcus aureus subsp. aureus ATCC 6538	$\ge 10^4$	подавлен	0	0 %	—	$\ge 72$ ч
Enterococcus faecalis ATCC 29212	$\ge 10^4$	подавлен	0	0 %	—	$\ge 72$ ч

Ограничения и особенности применения

Возможен незначительный осадок в среде, что является её свойством и не влияет на результаты.
Некоторые штаммы Proteus могут давать окрашивание от красного до жёлтого с чёрными центрами, что приводит к ложноположительным реакциям.
Неэнтерики, такие как Pseudomonas и Providencia, могут образовывать красные колонии.
S. Paratyphi A, S. Choleraesuis, S. Pullorum и S. Gallinarum могут формировать красные колонии без продукции H₂S, напоминая виды Shigella.
Для окончательной идентификации требуется проведение дополнительных биохимических или серологических тестов.
Из-за вариативности потребностей в питательных веществах некоторые виды могут демонстрировать различные паттерны роста.

Условия эксплуатации и хранения

Хранение порошка: в плотно закрытом контейнере при температуре 10–30 °C.
Хранение готовой среды: при температуре 20–30 °C.
Особенности: Из-за гигроскопичности продукта после вскрытия флакон необходимо плотно закрывать для предотвращения образования комков. Хранить в сухом вентилируемом помещении, вдали от источников воспламенения и экстремальных температур.

Утилизация

Загрязненные материалы и остатки среды должны быть стерилизованы в автоклаве или подвергнуты инсинерации перед утилизацией в соответствии с установленными лабораторными процедурами по обращению с инфекционными материалами.