Анаэробный агар без глюкозы HiMedia M230-500G (уп/500 гр)

Диагностическая дифференциальная питательная среда Анаэробный агар без глюкозы HiMedia M230-500G (уп/500 гр) производства HiMedia. Рекомендуется для изучения ферментации углеводов и определения гемолитической активности Clostridia, Streptococci и других микроорганизмов.

Принцип измерения и интерпретация

Анаэробный агар без глюкозы не содержит декстрозы, что позволяет использовать его для анализа ферментации углеводов и изучения гемолитической активности клостридий, стрептококков и иных организмов.

Единственным источником питания является триптон, который обеспечивает азот, углерод, длинноцепочечные аминокислоты, витамины и другие необходимые нутриенты. В составе не используются другие пептоны с высоким содержанием углеводов (например, дрожжевой экстракт или соевый пептон), чтобы обеспечить четкость гемолитических реакций.

Для создания условий, необходимых для культивирования анаэробных бактерий, в среду добавлены тиогликоллат натрия и формальдегидсульфоксилат натрия; индикацией этих условий служит присутствие в среде красителя метиленового синего. Хлорид натрия поддерживает осмотический баланс.

Подготовка анаэробного кровяного агара

Для проведения гемолитических тестов plates анаэробного кровяного агара готовят одним из двух способов:

1. Стерильную кровь в объеме около 0,7 мл и небольшую посевную дозу смешивают с 25–50 мл охлажденного агара, после чего смесь разливают в чашки Петри, заполняя их на 3/4. После затвердевания крышку заменяют на специальную анаэробную крышку для чашек Петри (Brewer Anaerobic Petri plate cover).
2. На обычную стерильную чашку с кровяным агаром (приготовленную на базе Blood Agar Base или Tryptone Soya Agar) наносят посев культуры. Затем поверх разливают расплавленный и охлажденный Анаэробный агар без глюкозы для обеспечения надлежащей глубины слоя. После затвердевания крышку заменяют на анаэробную.

Важные ограничения:

• Внутренний бортик анаэробной крышки должен герметизировать агар; среда внутри бортика не должна касаться крышки в любой точке.
• После добавления крови среда должна приобрести вишнево-красный цвет.

Методика приготовления и использования

Приготовление среды

1. Суспендировать 38,0 г порошка в 1000 мл очищенной или дистиллированной воды.
2. Нагреть до кипения для полного растворения компонентов.
3. Стерилизовать в автоклаве при температуре 121 °C (давление $\approx$0,1 МПа) в течение 15 минут.
4. Охладить до 45–50 °C.
5. Тщательно перемешать и разлить в стерильные чашки Петри.

Работа с образцами

• Тип образца: клинические образцы (кал, абсцесс).
• Обращение: сбор и транспортировка образцов должны осуществляться согласно установленным руководствам. После использования загрязненные материалы подлежат стерилизации в автоклаве перед утилизацией.

Технические характеристики

Состав (г/л)

• Конечный pH (при 25 °C): 7,2 $\pm$ 0,2

Общие параметры

Контроль качества

• Внешний вид: однородный свободнотекучий порошок от кремового до желтого цвета.
• Желирование: плотный гель, сопоставимый с 1,5% агаром.
• Цвет и прозрачность: при разливе в чашки Петри образуется прозрачный или слегка опалесцирующий гель светло-янтарного цвета, который при стоянии становится зеленоватым из-за аэрации.
• Реакция: pH 3,8% (масса/объем) водного раствора при 25 °C составляет 7,2 $\pm$ 0,2.
• Диапазон pH: 7,00–7,40.

Культуральные характеристики

Наблюдаются в анаэробных условиях после инкубации при 35–37 °C в течение 18–48 часов.

Условия эксплуатации и хранения

• Хранение порошка: в плотно закрытом контейнере при температуре 10–30 °C в сухом вентилируемом помещении, вдали от источников возгорания и экстремальных температур. Из-за гигроскопичности продукта после вскрытия флакон необходимо плотно закрывать во избежание образования комков.
• Хранение готовой среды: при температуре 20–30 °C.
• Срок годности: использовать до даты, указанной на этикетке.

Меры предосторожности и утилизация

• Только для диагностики in vitro и профессионального использования.
• При работе использовать защитные перчатки, спецодежду, средства защиты глаз и лица.
• Соблюдать стандартные правила микробиологической лабораторной практики.
• Утилизация: отработанные или непригодные препараты должны быть уничтожены путем автоклавирования и/или сжигания в соответствии с лабораторными протоколами по обращению с инфекционными материалами.