Анаэробный агар без глюкозы HiMedia M230-500G (уп/500 гр)

Питательная диагностическая и дифференциальная среда HiMedia M230-500G Anaerobic Agar w/o Dextrose (уп/500 гр) — анаэробный агар без глюкозы с конечным pH 7,2 ± 0,2. Среда предназначена для изучения ферментации углеводов и гемолитической активности клостридий, стрептококков и других микроорганизмов, включая анализ клинических образцов кала и содержимого абсцессов.

Назначение

Анаэробный агар без глюкозы применяют для:

• изучения ферментации углеводов;
• определения гемолитической активности Clostridia, Streptococci и других микроорганизмов;
• культивирования анаэробных бактерий;
• работы с клиническими образцами, включая кал и материал из абсцессов.

Тип питательной среды: диагностическая, дифференциальная.
Назначение изделия: агар.
Регистрационный документ: ФСЗ 2009/03707.

Состав

Состав, г/л:

Формула скорректирована и стандартизирована для обеспечения заданных рабочих характеристик.

Конечный pH при 25 °C: 7,2 ± 0,2.

Принцип действия и интерпретация

Анаэробный агар без глюкозы не содержит декстрозу и предназначен для изучения ферментации углеводов и гемолитической активности Clostridia, Streptococci и других микроорганизмов.

Триптон является единственным источником питательных веществ в среде. Он обеспечивает микроорганизмы азотом и углеродом, аминокислотами с длинной цепью, витаминами и другими необходимыми питательными веществами.

Другие пептоны, богатые углеводами, включая дрожжевой экстракт или соевый пептон, в среду не вводятся, поскольку состав среды обеспечивает выраженные гемолитические реакции.

Тиогликолят натрия и формальдегидсульфоксилат натрия создают условия, необходимые для культивирования анаэробных бактерий. Наличие восстановительных условий контролируют по метиленовому синему, входящему в состав среды. Хлорид натрия поддерживает осмотическое равновесие.

Для гемолитических тестов анаэробные кровяные агаровые чашки можно готовить одним из следующих способов.

Способ 1

Стерильную кровь в количестве около 0,7 мл и небольшое количество посевного материала смешивают с 25–50 мл охлаждённого агара. Смесь разливают в чашку Петри, заполняя её до 3/4 объёма. После застывания среды крышку заменяют крышкой для анаэробных чашек Петри Brewer.

Способ 2

Обычную стерильную чашку с кровяным агаром, приготовленным на основе основы кровяного агара или триптиказо-соевого агара (TSA), засевают штриховым методом. Затем на кровяной агар наливают расплавленный и охлаждённый анаэробный агар без глюкозы, чтобы обеспечить необходимую толщину слоя. После застывания среды крышку заменяют крышкой для анаэробных чашек Петри.

Крышка для анаэробной чашки не должна опираться на дно чашки Петри. Внутренний выступ крышки должен герметично прилегать к агару, при этом среда внутри выступа не должна соприкасаться с крышкой ни в одной точке.

После добавления крови среда должна иметь вишнёво-красный цвет.

Приготовление среды

1. Суспендируйте 38,0 г сухой среды в 1000 мл очищенной или дистиллированной воды.
2. Нагрейте суспензию до кипения для полного растворения среды.
3. Стерилизуйте автоклавированием при давлении 15 фунтов (≈0,103 МПа) и температуре 121 °C в течение 15 мин.
4. Охладите среду до 45–50 °C.
5. Тщательно перемешайте.
6. Разлейте среду в стерильные чашки Петри.

Образцы

Тип образца: клинический образец — кал, материал из абсцесса.

Сбор и обращение с образцами

При работе с клиническими образцами используйте соответствующие методы обращения с материалом в соответствии с утверждёнными лабораторными руководствами.

После использования загрязнённые материалы необходимо стерилизовать автоклавированием перед утилизацией.

Меры безопасности

• Только для диагностики in vitro.
• Только для профессионального применения.
• Перед открытием контейнера прочитайте этикетку.
• При работе используйте защитные перчатки, защитную одежду, средства защиты глаз и лица.
• Соблюдайте надлежащие правила микробиологической работы при обращении с образцами и культурами.
• При работе с клиническими образцами соблюдайте стандартные меры предосторожности.
• Руководствуйтесь требованиями безопасности, приведёнными в соответствующих паспортах безопасности.

Ограничения применения

1. Крышка для анаэробной чашки не должна опираться на дно чашки Петри. Внутренний выступ крышки должен герметично прилегать к агару, а среда внутри выступа не должна соприкасаться с крышкой ни в одной точке.
2. После добавления крови среда должна иметь вишнёво-красный цвет.

Оценка рабочих характеристик

Рабочие характеристики среды обеспечиваются при использовании в соответствии с инструкцией на этикетке, в пределах срока годности и при хранении при рекомендованной температуре.

Контроль качества

Внешний вид

Внешний вид: однородный сыпучий порошок от кремового до жёлтого цвета.

Гелеобразование

Гелеобразование: плотный гель, сопоставимый с 1,5%-ным агаровым гелем.

Цвет и прозрачность приготовленной среды

Цвет и прозрачность приготовленной среды: в чашках Петри образуется прозрачный или слегка опалесцирующий гель светло-янтарного цвета, который при выдерживании на воздухе из-за аэрации приобретает зеленоватый оттенок.

Реакция среды

Реакция: реакция 3,8%-ного водного раствора при 25 °C.

pH: 7,00–7,40.

Культуральные характеристики

Культуральные характеристики определяют в анаэробных условиях после инкубации при 35–37 °C в течение 18–48 ч.

Технические характеристики

Хранение и срок годности

• Хранить сухую среду в плотно закрытом контейнере при температуре 10–30 °C.
• Приготовленную среду хранить при температуре 20–30 °C.
• Использовать до даты окончания срока годности, указанной на этикетке.
• После вскрытия плотно закрывать флакон и хранить продукт в сухом состоянии, чтобы предотвратить образование комков из-за гигроскопичности.
• Неправильное хранение может привести к образованию комков.
• Хранить в сухом вентилируемом помещении, защищённом от экстремальных температур и источников воспламенения.
• После каждого использования плотно закрывать контейнер.
• Рабочие характеристики продукта сохраняются при использовании в течение установленного срока годности.

Утилизация

Пользователь обязан обеспечить безопасную утилизацию использованных или непригодных препаратов посредством автоклавирования и/или сжигания.

При утилизации инфекционных материалов необходимо соблюдать установленные лабораторные процедуры. Материал, контактировавший с клиническими образцами, должен быть обеззаражен и утилизирован в соответствии с действующими лабораторными методиками.