Анаэробный агар без декстрозы и Eh индикатора HiMedia M229-500G (уп/500 гр)

Питательная среда Анаэробный агар без декстрозы и Eh индикатора HiMedia M229-500G (уп/500 гр) предназначена для культивирования анаэробных микроорганизмов и не содержит декстрозу и метиленовый синий как индикатор Eh. Среда применяется для выделения и идентификации анаэробных патогенов, а также исследования гемолитической активности Clostridia, Streptococci и других анаэробных организмов.

Назначение

• Назначение: выделение и идентификация анаэробных патогенов.
• Дополнительное назначение: исследование гемолитической активности клостридий, стрептококков и других анаэробных организмов.
• Тип питательной среды: диагностический.
• Назначение изделия: агар.
• Сертификат: ФСЗ 2009/03707.
• Тип образца: клинические образцы — кал, содержимое абсцессов.
• Применение: только для диагностики in vitro и профессионального использования.

Состав

Формула на 1 л среды:

Конечное значение pH при 25 °C: 7,2 ± 0,2.

Формула скорректирована и стандартизирована для обеспечения установленных рабочих характеристик.

Принцип действия и интерпретация

Анаэробный агар без декстрозы и метиленового синего, используемого как индикатор окислительно-восстановительного потенциала (Eh), предназначен для исследования гемолитической активности клостридий, стрептококков и других анаэробных организмов.

Тиогликолят натрия и формальдегидсульфоксилат натрия обеспечивают условия, необходимые для анаэробиоза. Триптон служит источником азота и углерода, длинноцепочечных аминокислот, витаминов и других необходимых питательных веществ. Хлорид натрия поддерживает осмотическое равновесие среды.

Для выделения или культивирования высокоферментативных маслянокислых типов перед стерилизацией допускается добавление 1 % декстрозы.

Методика приготовления среды

1. Суспендируйте 43,0 г порошка в 1000 мл очищенной или дистиллированной воды.
2. Нагрейте до кипения для полного растворения среды.
3. Стерилизуйте автоклавированием при давлении 15 фунтов на квадратный дюйм (15 psi; приблизительно 0,103 МПа) при 121 °C в течение 15 мин.
4. Охладите среду до 45–50 °C.
5. Тщательно перемешайте и разлейте в стерильные чашки Петри.

Приготовление анаэробных кровяных чашек для гемолитических тестов

Анаэробные кровяные чашки можно подготовить одним из следующих способов.

1. Смешайте стерильную кровь в количестве приблизительно 0,7 мл и небольшое количество посевного материала с 25–50 мл охлаждённого агара. Перелейте смесь в чашку Петри, заполнив её приблизительно на 3/4 объёма. После застывания среды замените крышку чашки на крышку для анаэробных чашек Петри Brewer.
2. Нанесите культуру штриховым посевом на обычную стерильную чашку с кровяным агаром, приготовленным на основе кровяного агара или триптон-соевого агара (TSA). Затем залейте кровяной агар расплавленным и охлаждённым анаэробным агаром без декстрозы до получения необходимой толщины слоя. После застывания среды замените крышку чашки на крышку для анаэробных чашек Петри.

После добавления крови среда должна иметь вишнёво-красный цвет.

Крышка для анаэробных чашек не должна опираться на дно чашки Петри. Внутренний выступ крышки должен герметично прилегать к агару, при этом среда внутри выступа не должна соприкасаться с крышкой ни в одной точке.

Работа с образцами

Сбор и обработка образцов

Для клинических образцов применяйте соответствующие методы обращения с материалом в соответствии с установленными лабораторными руководствами.

После использования загрязнённые материалы необходимо стерилизовать автоклавированием перед утилизацией.

Предупреждения и меры предосторожности

• Только для диагностики in vitro.
• Только для профессионального использования.
• Перед открыванием контейнера изучите маркировку.
• При работе используйте защитные перчатки, защитную одежду, средства защиты глаз и лица.
• Соблюдайте правила надлежащей микробиологической работы при обращении с образцами и культурами.
• При работе с клиническими образцами соблюдайте стандартные меры предосторожности в соответствии с установленными руководствами.
• Требования безопасности приведены в соответствующих паспортах безопасности.

Ограничения применения

1. Крышка для анаэробных чашек не должна опираться на дно чашки Петри. Внутренний выступ крышки должен герметично прилегать к агару, а среда внутри выступа не должна соприкасаться с крышкой ни в одной точке.
2. После добавления крови среда должна иметь вишнёво-красный цвет.

Контроль качества

Внешний вид порошка

Внешний вид: однородный, легко сыпучий порошок от кремового до жёлтого цвета.

Гелеобразование

Гелеобразование: плотный гель, сопоставимый с гелем 1,5 % агара.

Цвет и прозрачность приготовленной среды

Цвет и прозрачность: в чашках Петри образуется прозрачный или слегка опалесцирующий гель от жёлтого до светло-янтарного цвета.

Реакция и pH

• Реакция: реакция водного раствора концентрацией 4,3 % (м/об) при 25 °C.
• pH по реакции раствора: 7,2 ± 0,2.
• Диапазон pH: 7,00–7,40.

Культуральные характеристики

Культуральные характеристики оценивают в анаэробных условиях после инкубации при 35–37 °C в течение 18–48 ч.

Условия хранения и срок годности

• Температура хранения сухой среды: 10–30 °C.
• Условия хранения сухой среды: плотно закрытый контейнер.
• Температура хранения приготовленной среды: 20–30 °C.
• Срок использования: до даты окончания срока годности, указанной на этикетке.
• После вскрытия храните продукт в сухом виде, плотно закрыв контейнер.
• Порошок обладает гигрос