HiMedia M1852I-500G Модифицированный железо-сульфитный агар
HiMediaHiMedia·Арт.: 0049431·Арт. произв.: M1852I-500G

HiMedia M1852I-500G Модифицированный железо-сульфитный агар

Под заказ14 580 руб.

Питательная микробиологическая среда HiMedia M1852I-500G Модифицированный железо-сульфитный агар предназначена для количественного определения сульфитредуцирующих бактерий, растущих в анаэробных условиях. Среда применяется для анализа изолированных микроорганизмов с инкубацией при 36–38 °C в течение 24–48 ч; чёрные колонии, возможно окружённые чёрной зоной, учитывают как сульфитредуцирующие бактерии.

Описание

Питательная микробиологическая среда HiMedia M1852I-500G Модифицированный железо-сульфитный агар предназначена для количественного определения сульфитредуцирующих бактерий, растущих в анаэробных условиях. Среда применяется для анализа изолированных микроорганизмов с инкубацией при 36–38 °C в течение 24–48 ч; чёрные колонии, возможно окружённые чёрной зоной, учитывают как сульфитредуцирующие бактерии.

Назначение и область применения

Модифицированный железо-сульфитный агар предназначен для количественного определения сульфитредуцирующих бактерий, растущих в анаэробных условиях. Среда применяется для работы с изолированными микроорганизмами, в том числе для выявления бактерий рода Clostridia.

Состав среды и критерии её эффективности соответствуют требованиям ISO 15213-1:2023 и ISO 11133:2014 с поправкой 2020 года. Методика может выполняться с использованием пробирок или чашек Петри.

Состав

Состав, г/л:

Компонентг/л
Пептон15,000
Соевый пептон5,000
Дрожжевой экстракт5,000
Дисульфит натрия0,500
Железоаммонийный цитрат1,000
Агар15,000

Формула скорректирована и стандартизирована для обеспечения заданных показателей эффективности среды.

  • Конечный pH при 25 °C: 7,6 ± 0,2
  • Рабочий раствор для определения реакции: 4,15 % масс./об. при 25 °C

Принцип измерения и интерпретация

Большинство представителей рода Clostridia имеют сульфитредуктазу в цитоплазме, но не способны выводить её наружу. При образовании H₂S из сульфита происходит реакция с железом, содержащимся в цитрате, с формированием осадка сульфида железа. В результате колонии приобретают тёмную или чёрную окраску.

Функции компонентов среды:

  • пептон и соевый пептон обеспечивают микроорганизмы источниками углерода и азота, витаминами, минеральными веществами и аминокислотами, необходимыми для роста;
  • дрожжевой экстракт служит источником витаминов, особенно витаминов группы B;
  • железоаммонийный цитрат и дисульфит натрия используются как индикаторы образования H₂S;
  • Clostridium perfringens восстанавливает сульфит до сульфида, который реагирует с железом с образованием чёрного осадка сульфида железа, визуально проявляющегося в виде чёрных колоний;
  • агар выполняет функцию отверждающего компонента.

Чёрные колонии, возможно окружённые чёрной зоной, учитывают как сульфитредуцирующие бактерии.

Методика приготовления среды

  1. Суспендируйте 41,50 г сухой среды в 1000 мл очищенной или дистиллированной воды.
  2. Нагрейте суспензию до кипения для полного растворения среды.
  3. Стерилизуйте автоклавированием при давлении 15 фунтов на квадратный дюйм (≈0,10335 МПа) и температуре 121 °C в течение 15 мин.
  4. Охладите среду до 45–50 °C.
  5. Тщательно перемешайте.
  6. Разлейте среду в стерильные пробирки или налейте в стерильные чашки Петри.

Методика количественного определения

Посев в чашки Петри

  1. Используя свежую стерильную пипетку, внесите в каждую чашку Петри 10⁻¹ первого десятичного разведения исследуемой пробы, если продукт является жидким.
  2. Для других продуктов внесите в каждую чашку Петри 10⁻² первого десятичного разведения исходной суспензии.
  3. Залейте инокулят железо-сульфитным агаром.
  4. Осторожно перемешайте инокулят со средой горизонтальными движениями.
  5. Оставьте среду до полного застывания.
  6. После застывания нанесите поверх среды в чашке Петри слой того же агара объёмом 5–10 мл.

Посев в пробирки

  1. Внесите по 1 мл каждого разведения в каждую из двух пробирок со средой.
  2. Осторожно перемешайте содержимое, не допуская образования пузырьков.
  3. Оставьте среду до застывания.
  4. После застывания нанесите в каждую пробирку слой того же агара объёмом 2–3 мл.
  5. После застывания инкубируйте среду при 36–38 °C в течение 24–48 ч.

При подозрении на наличие термофильных бактерий подготовьте второй комплект чашек Петри и инкубируйте его при температуре 50 °C ± 1 °C.

Тип образца и обращение с ним

  • Тип образца: изолированные микроорганизмы.
  • Сбор и обработку образцов изолированных микроорганизмов выполняйте с применением соответствующих методик, руководств и местных нормативных требований.
  • После использования загрязнённые материалы необходимо стерилизовать автоклавированием перед утилизацией.

Технические характеристики

ПараметрЗначение
НазначениеАгар для количественного определения сульфитредуцирующих бактерий
Физическая формаПорошок
ПроисхождениеЖивотное
Тип продуктаСтандартный
Тип упаковкиПолиэтилен высокой плотности (HDPE)
Масса500 г
Конечный pH при 25 °C7,6 ± 0,2
Диапазон pH7,40–7,80
Условия хранения сухой среды10–30 °C
Условия хранения приготовленной среды2–8 °C

Контроль качества

Внешний вид

Сыпучий однородный порошок от светло-жёлтого до желтовато-коричневого цвета.

Гелеобразование

Плотный гель, сопоставимый с 1,5%-ным агаровым гелем.

Цвет и прозрачность приготовленной среды

В чашках Петри образуется жёлтый слегка опалесцирующий гель.

Реакция

Реакция водного раствора с концентрацией

Характеристики

Производитель/Серия

ПроизводительHiMedia

Назначение изделия

Назначение изделияАгар

Габариты и вес

Вес500г

Похожие товары

Запросить коммерческое предложение