HiMedia M031-100G Ксилозо-лизин-дезоксихолатный агар (XLD)

HiMedia·Арт.: 0048959·Арт. произв.: M031-100G

HiMedia M031-100G Ксилозо-лизин-дезоксихолатный агар (XLD)

Name: HiMedia M031-100G Ксилозо-лизин-дезоксихолатный агар (XLD)
Brand: HiMedia
SKU: 0048959
Price: 4049 RUB
Availability: PreOrder

Под заказ4 049 руб.

Дифференциально-диагностическая среда HiMedia M031-100G Ксилозо-лизин-дезоксихолатный агар (XLD) для изоляции и подсчета Salmonella Typhi и других видов Salmonella. Применяется при анализе клинических образцов, проб пищевых продуктов, молочной продукции и воды; обладает повышенной селективностью и чувствительностью по сравнению с агаром SS (M108) и агаром EMB (M022).

Описание

Принцип измерения и интерпретация

XLD агар является селективной и дифференциальной средой. В качестве селективного агента используется дезоксихолат натрия, который подавляет рост грамположительных микроорганизмов.

Механизм дифференциации основан на следующем:

Источники питания: экстракт дрожжей обеспечивает азот и витамины. Сахара (ксилоза, лактоза, сахароза) служат источниками ферментируемых углеводов.
Дифференциация Shigella: ксилоза включена в состав, так как она практически не ферментируется видами Shigella, но ферментируется большинством других энтеробактерий.
Дифференциация Salmonella: лизин добавлен для отделения группы Salmonella от непатогенных организмов. Salmonellae быстро ферментируют ксилозу, после чего фермент лизин-декарбоксилаза расщепляет лизин с образованием аминов, что приводит к возврату среды в щелочное состояние (pH повышается), имитируя реакцию Shigella.
Подавление колиформ: лактоза и сахароза добавлены для того, чтобы лизин-положительные колиформы вырабатывали избыток кислоты, предотвращая щелочную реакцию.
Индикация: расщепление сахаров до кислот окрашивает индикатор феноловый красный в жёлтый цвет. Бактерии, декарбоксилирующие лизин до кадаверина, создают красное окрашивание вокруг колоний из-за повышения pH.
Определение H₂S: система индикации сероводорода (тиосульфат натрия и цитрат аммония железа (III)) позволяет визуализировать выработку H₂S, что приводит к формированию колоний с чёрными центрами. Непатогенные продуценты H₂S не декарбоксилируют лизин, поэтому кислая реакция препятствует почернению колоний.

Область применения

Среда предназначена для работы с следующими типами образцов:

Клинические образцы: фекалии.
Пищевые и молочные продукты.
Пробы воды.

Методика приготовления

Растворить 56,68 г порошка в 1000 мл очищенной или дистиллированной воды.
Нагревать при постоянном перемешивании до кипения. ЗАПРЕЩЕНО автоклавировать или перегревать среду.
Немедленно перенести в водяную баню с температурой 50 °C.
После охлаждения разлить в стерильные чашки Петри.

Примечание: Не рекомендуется готовить большие объемы среды, требующие длительного нагрева, так как это может привести к выпадению осадка. Незначительный осадок может присутствовать в среде изначально — это присущее свойство состава, не влияющее на эффективность работы.

Технические характеристики

Состав (г/л)

Компонент	г/л
Экстракт дрожжей	3,000
L-Лизин	5,000
Лактоза	7,500
Сахароза	7,500
Ксилоза	3,500
Хлорид натрия	5,000
Дезоксихолат натрия	2,500
Тиосульфат натрия	6,800
Цитрат аммония железа (III)	0,800
Феноловый красный	0,080
Агар	15,000

Конечный pH (при 25 °C): 7,4 ± 0,2
Происхождение компонентов: животное
Тип продукта: регулярный
Физическая форма: порошок
Материал упаковки: ПНД (HDPE)

Контроль качества

Параметр	Показатель
Внешний вид	светло-жёлтый или розовый гомогенный свободнотекучий порошок
Желирование	плотный гель, сопоставим с 1,5 % агаром
Цвет и прозрачность готовой среды	красный прозрачный или слегка опалесцирующий гель
Реакция (5,67 % водный раствор при 25 °C)	pH: 7,4 ± 0,2
Диапазон pH	7,20–7,60

Культуральные характеристики

Результаты наблюдались после инкубации при 35–37 °C. Скорость восстановления считается 100 % для роста бактерий на соево-казеиновом дигест-агаре.

Организм	Посевная доза (КОЕ)	Рост	Значение лота (КОЕ)	Восстановление	Цвет колонии	Период инкубации
Salmonella Typhimurium ATCC 14028	50–100	обильный	25–100	$\ge$ 50 %	красные с чёрными центрами	18–72 ч
Salmonella Abony NCTC 6017	50–100	хороший/обильный	25–100	$\ge$ 50 %	красные с чёрными центрами	18–72 ч
Escherichia coli ATCC 8739	50–100	удовлетворительный	10–30	20–30 %	жёлтые	18–72 ч
Escherichia coli ATCC 25922	50–100	удовлетворительный	10–30	20–30 %	жёлтые	18–72 ч
Proteus hauseri ATCC 13315	50–100	хороший/обильный	25–100	$\ge$ 50 %	серые с чёрными центрами	18–72 ч
Salmonella Paratyphi A ATCC 9150	50–100	хороший/обильный	25–100	$\ge$ 50 %	красные	18–72 ч
Salmonella Paratyphi B ATCC 8759	50–100	хороший/обильный	25–100	$\ge$ 50 %	красные с чёрными центрами	18–72 ч
Salmonella Enteritidis ATCC 13076	50–100	хороший/обильный	25–100	$\ge$ 50 %	красные с чёрными центрами	18–72 ч
Salmonella Typhi ATCC 6539	50–100	хороший/обильный	25–100	$\ge$ 50 %	красные с чёрными центрами	18–72 ч
Shigella dysenteriae ATCC 13313	50–100	хороший/обильный	25–100	$\ge$ 50 %	красные	18–72 ч
Shigella flexneri ATCC 12022	50–100	удовлетворительный/хороший	15–40	30–40 %	красные	18–72 ч
Shigella sonnei ATCC 25931	50–100	удовлетворительный/хороший	15–40	30–40 %	красные	18–72 ч
Klebsiella aerogenes ATCC 13048	50–100	удовлетворительный	10–30	20–30 %	жёлтые	18–72 ч
Enterobacter cloacae ATCC 13047	50–100	удовлетворительный	10–30	20–30 %	жёлтые	18–72 ч
Staphylococcus aureus subsp. aureus ATCC 25923	$\ge 10^4$	подавлен	0	0 %	—	$\ge$ 72 ч
Staphylococcus aureus subsp. aureus ATCC 6538	$\ge 10^4$	подавлен	0	0 %	—	$\ge$ 72 ч
Enterococcus faecalis ATCC 29212	$\ge 10^4$	подавлен	0	0 %	—	$\ge$ 72 ч

Ограничения применения

Среда является универсальной и может не поддерживать рост требовательных микроорганизмов.
Некоторые штаммы Proteus могут давать окрашивание от красного к жёлтому, при этом большинство колоний развивают чёрные центры, что приводит к ложноположительным реакциям.
Неэнтерические бактерии, такие как Pseudomonas и Providencia, могут образовывать красные колонии.
S. Paratyphi A, S. Choleraesuis, S. Pullorum и S. Gallinarum могут формировать красные колонии без продукции H₂S, что делает их схожими с видами Shigella.

Условия эксплуатации и хранения

Хранение порошка: в плотно закрытом контейнере при температуре 10–30 °C в сухом вентилируемом месте, защищенном от экстремальных температур и источников возгорания. Из-за гигроскопичности продукта необходимо плотно закрывать флакон для предотвращения образования комков.
Хранение готовой среды: при температуре 20–30 °C.
Срок годности: использовать до даты, указанной на этикетке.

Меры предосторожности и утилизация

Продукт предназначен для диагностики in vitro и профессионального использования.
При работе использовать защитные перчатки, одежду, средства защиты глаз и лица.
Соблюдать стандартные правила микробиологической безопасности при работе с клиническими образцами.
Утилизация: использованные или непригодные препараты должны быть уничтожены путем автоклавирования и/или сжигания в соответствии с лабораторными процедурами по обращению с инфекционными материалами.