Готовая питательная среда Агар HiCombi™ MacConkey - МакКонки чашка HiMedia HB012-20PT (20 чашек) — селективно-дифференциальный агар для микробиологического контроля. Среда предназначена для выделения и дифференциации E. coli и других кишечных бактерий, в том числе из фармацевтических образцов; для подтверждения результатов необходимы биохимические и серологические исследования.

Назначение и область применения

Среда предназначена для селективного выделения и дифференциации Escherichia coli и других энтеробактерий из фармацевтических препаратов в рамках гармонизированной методики испытания на микробиологическую чистоту USP/EP/BP/JP. Также применяется для исследования пищевых продуктов, молочной продукции и воды.

Агар МакКонки — селективная и дифференциальная среда для культивирования колиформных бактерий. Среда и бульон МакКонки рекомендованы для микробиологического исследования пищевых продуктов, а агар — для прямого посева проб воды при определении колиформных бактерий. Среда также применяется при микробиологическом исследовании молока и молочных продуктов согласно стандартным методам исследования этой продукции.

Состав

Состав на 1 л:

Формула скорректирована и стандартизирована для достижения заданных рабочих характеристик.

Панкреатический гидролизат желатина.

Пептоны из мяса и казеина.

Принцип действия и интерпретация

Желатиновый пептон и пептон HMC обеспечивают микроорганизмы необходимыми питательными веществами, витаминами и азотистыми факторами. Лактозы моногидрат служит ферментируемым источником углеводов. Кристаллический фиолетовый и желчные соли подавляют рост большинства грамположительных бактерий, обеспечивая селективность среды. Хлорид натрия поддерживает осмотический баланс.

После обогащения Escherichia coli в бульоне МакКонки MH083 культуру пересеивают на агар МакКонки. Грамотрицательные бактерии обычно хорошо растут на этой среде и дифференцируются по способности ферментировать лактозу:

• Штаммы, ферментирующие лактозу, образуют красные или розовые колонии; вокруг них может формироваться зона осаждения желчных солей кислотой.
• Красная окраска обусловлена образованием кислоты при ферментации лактозы, поглощением нейтрального красного и изменением окраски красителя при снижении pH среды ниже 6,8.
• Штаммы, не ферментирующие лактозу, например Shigella и Salmonella, образуют бесцветные прозрачные колонии и обычно не изменяют внешний вид среды.
• Yersinia enterocolitica после инкубации при комнатной температуре может образовывать мелкие колонии, не ферментирующие лактозу.

Методика посева

1. Асептически нанесите тестовую посевную дозу 50–100 КОЕ штриховым посевом.
2. Поверхность среды перед посевом должна быть сухой.

Образцы и обращение с ними

Типы образцов: фармацевтические препараты, пищевые продукты и молочная продукция, вода.

Для фармацевтических образцов сбор и обработку проб выполняют подходящими методами в соответствии с применимыми руководствами. Для пищевых продуктов и молочной продукции, а также для воды используют соответствующие методики сбора и обработки проб.

После использования загрязнённые материалы необходимо стерилизовать автоклавированием до утилизации.

Контроль качества

• Внешний вид: стерильный агар МакКонки в одноразовых чашках с двумя секциями диаметром 90 мм.
• Цвет среды: красный с фиолетовым оттенком.
• Объём среды: 10 мл в каждой секции одноразовой чашки диаметром 90 мм.
• pH: 6,90–7,30.
• Тест на стерильность: соответствует критериям выпуска.

Культуральные характеристики

Контроль роста проводят согласно гармонизированной методике ICH (USP/EP/BP/JP). Культуральные характеристики оценивали после инкубации при 30–35 °C в течение 18–72 ч. Показатель восстановления для роста бактерий на агаре с гидролизатом казеина и сои принят за 100 %.

Свойства, обеспечивающие рост: при заданной температуре рост микроорганизмов сопоставим с ростом, ранее полученным на испытанной и одобренной партии среды. При посеве 100 КОЕ инкубацию проводят при 30–35 °C не дольше минимального установленного времени — до 18 ч.

Индикаторные свойства: внешний вид колоний и характер индикаторной реакции сопоставимы с результатами, ранее полученными на испытанной и одобренной партии среды. При посеве не более 100 КОЕ инкубацию проводят при 30–35 °C в течение установленного интервала 18–72 ч.