HiCombi™ кровь- агар МакКонки чашка HiMedia HB006-50PT (50 чашек)

Готовая двухсекционная чашка с агаром HiCombi™ кровь- агар МакКонки чашка HiMedia HB006-50PT (50 чашек) содержит кровяной агар и агар МакКонки в чашках диаметром 90 мм. Предназначена для выделения и культивирования требовательных микроорганизмов, а также дифференциации колиформных бактерий и других кишечных патогенов; для подтверждения результатов необходимы дополнительные биохимические и серологические исследования.

Назначение

Среда предназначена для выделения и культивирования требовательных микроорганизмов и дифференциации колиформных бактерий и других кишечных патогенов. Подходит для клинических образцов, включая фекалии, мочу и другой патологический материал, а также для пищевых и молочных проб.

Состав

Основа кровяного агара

Состав на 1 л:

Агар МакКонки

Состав на 1 л:

Формулы скорректированы и стандартизованы с учётом рабочих характеристик. Пептон HM B# эквивалентен пептону из говяжьего сердца.

Принцип действия

Основа кровяного агара

Основа кровяного агара — высокопитательная среда, обычно используемая как базовая основа для приготовления кровяного агара путём добавления крови. Без крови её также можно использовать как среду общего назначения.

Добавление фенолфталеинфосфата позволяет выявлять стафилококки, продуцирующие фосфатазы (1). Среду с добавлением соли и агара используют для оценки поверхностного загрязнения оборудования и туш свиней (2), а также для определения диапазона солёности, переносимого морскими бактериями рода Flavobacteria (3). Среду также применяют для приготовления антигенов Salmonella Typhi (4). Основа кровяного агара рекомендована Американской ассоциацией общественного здравоохранения (APHA) и в сборниках стандартных методов (5–7) для исследования пищевых проб.

Пептон HM B и триптоза служат источниками углерода, азота, аминокислот и витаминов. Хлорид натрия поддерживает осмотическое равновесие среды. Добавление крови повышает её питательность и обеспечивает факторы роста, необходимые требовательным микроорганизмам; кроме того, это позволяет визуализировать гемолитические реакции. Характер гемолиза зависит от вида животной крови. Наилучшие результаты при выявлении стрептококков группы A получают с бараньей кровью (8). Однако баранья кровь не поддерживает рост Haemophilus haemolyticus, поскольку в ней недостаточно пиридиновых нуклеотидов. При использовании лошадиной крови колонии H. haemolyticus проявляют гемолиз и могут имитировать Streptococcus pyogenes (9).

Агар МакКонки

Агар МакКонки — слабоселективная дифференциальная среда для посева, преимущественно используемая для выявления и выделения грамотрицательных микроорганизмов из клинических (9), пищевых (5), водных (12), фармацевтических (13, 14) и промышленных проб (15). Среда также рекомендована для селекции и восстановления представителей семейства Enterobacteriaceae и родственных кишечных грамотрицательных палочек.

Селективность обусловлена желчными солями, концентрация которых ниже, чем в других средах для выделения кишечных бактерий, но достаточна для подавления грамположительных микроорганизмов. Среду, соответствующую рекомендациям APHA, можно применять для прямого посева проб воды с целью выявления колиформных бактерий, исследования пищевых проб на микроорганизмы, вызывающие пищевые отравления (4), а также выделения видов Salmonella и Shigella из сыра (4). Её также применяют для подсчёта коли-аэрогенов в фекалиях крупного рогатого скота и овец (21), подсчёта коли-аэрогенов и неферментирующих лактозу бактерий в тушках птицы (18), подсчёта бактерий в облучённом консервированном рубленом курином мясе (16) и выявления коли-аэрогенов при исследованиях рода Aeromonas (21). Агар МакКонки был одной из первых селективных дифференциальных сред для культивирования кишечных микроорганизмов из различных клинических образцов (8, 10).

Селективное действие среды обусловлено кристаллическим фиолетовым и желчными солями, подавляющими большинство грамположительных бактерий. Грамотрицательные бактерии обычно хорошо растут на этой среде и дифференцируются по способности ферментировать лактозу. Лактозоферментирующие штаммы образуют красные или розовые колонии, иногда окружённые зоной осаждения желчных кислот вследствие подкисления. Красная окраска возникает при образовании кислоты из лактозы, поглощении нейтрального красного и последующем изменении цвета красителя при снижении pH среды ниже 6,8. Неферментирующие лактозу штаммы, например Shigella и Salmonella, образуют бесцветные прозрачные колонии и обычно не изменяют внешний вид среды.

Пептон, триптон и желатиновый пептон обеспечивают среду азотом, углеродом, аминокислотами с длинными цепями и другими питательными веществами. Лактоза — ферментируемый углевод; хлорид натрия поддерживает осмотическое равновесие. Желчные соли и кристаллический фиолетовый — селективные компоненты, подавляющие рост грамположительных микроорганизмов. Нейтральный красный служит индикатором pH.

Методика посева

1. В асептических условиях нанесите исследуемый инокулят на поверхность среды методом штрихового посева.
2. Засевайте только сухую поверхность агара МакКонки.

Для пищевых и молочных проб сбор и обработку образцов выполняют подходящими методами согласно применимым руководствам (3, 4, 6). Клинические образцы обрабатывают согласно установленным руководствам (18, 19).

Контроль качества

Внешний вид и цвет

Стерильные кровяной агар и агар МакКонки разлиты в одноразовые двухсекционные чашки диаметром 90 мм. Поверхность сред гладкая, без чёрных частиц, трещин и пузырьков.

• Кровяной агар: среда красного цвета.
• Агар МакКонки: среда красного цвета с пурпурным оттенком.

Количество и pH

• Объём среды: 10 мл в каждой секции чашки.
• pH кровяного агара: 7,10–7,50.
• pH агара МакКонки: 6,90–7,30.

Проверка стерильности

Среда соответствует критериям выпуска по стерильности.

Культуральные характеристики

Культуральные характеристики оценивают после инкубации при 35–37 °C в течение 18–48 ч.