Висмут-сульфитный агар, гранулированный HiMedia GM027-500G (500 г)

HiMedia·Арт.: 0039023·Арт. произв.: GM027-500G

Висмут-сульфитный агар, гранулированный HiMedia GM027-500G (500 г)

Name: Висмут-сульфитный агар, гранулированный HiMedia GM027-500G (500 г)
Brand: HiMedia
SKU: 0039023
Price: 8546 RUB
Availability: PreOrder

Под заказ8 546 руб.

Селективная питательная среда Висмут-сульфитный агар, гранулированный HiMedia GM027-500G (500 г) для изоляции и подсчета видов Salmonella из образцов пищевых продуктов. Состав и критерии эффективности среды соответствуют спецификациям стандарта ISO 6579-1:2017.

Описание

Принцип измерения и интерпретация

Среда представляет собой модификацию оригинального метода Уилсона и Блэра. Висмут-сульфитный агар рекомендуется для изоляции и предварительной идентификации Salmonella Typhi и других видов Salmonella из патологических материалов, сточных вод, воды, пищевых продуктов и других объектов.

Механизм селективности: Индикатор висмут-сульфит совместно с бриллиантовым зеленым подавляет рост кишечных грамположительных и грамнотрицательных бактерий.
Индикация: S. Typhi, S. Enteritidis и S. Typhimurium обычно растут в виде черных колоний (с металлическим блеском или без него), что обусловлено продукцией сероводорода (H₂S) и восстановлением сульфита до черного сульфида железа (III). Salmonella Paratyphi A образует светло-зеленые колонии.
Особенности: Среда обладает уникальным ингибирующим действием в отношении грамположительных организмов и колиформ, что позволяет использовать более высокую посевную дозу по сравнению с другими селективными средами.

Важное ограничение: Висмут-сульфитный агар может подавлять рост некоторых штаммов Salmonella, поэтому его не следует использовать как единственную селективную среду для данных организмов.

Состав

Спецификация ISO 6579-1

Компонент	г/л
Ферментативный гидролизат тканей животных	10,000
Мясной экстракт	5,000
Декстроза	5,000
Гидрофосфат натрия двуводный, безводный	4,000
Сульфат железа (II), безводный	0,300
Висмут-сульфитный индикатор	8,000
Бриллиантовый зеленый	0,025
Агар	20,000
Конечный pH (при 25 °C)	7,7 ± 0,2

Bismuth Sulphite Agar, Granulated®

Компонент	г/л
Пептон	10,000
Экстракт HM	5,000
Декстроза (глюкоза)	5,000
Гидрофосфат натрия двуводный, безводный	4,000
Сульфат железа (II), безводный	0,300
Висмут-сульфитный индикатор	8,000
Бриллиантовый зеленый	0,025
Агар	20,000
Конечный pH (при 25 °C)	7,7 ± 0,2

Методика проведения анализа

Подготовка среды

Суспендируйте 52,33 г порошка в 1000 мл очищенной или дистиллированной воды.
Нагрейте до кипения для полного растворения компонентов.
ВНИМАНИЕ: Не стерилизуйте среду в автоклаве или методом фракционного стерилизации; перегрев разрушает селективные свойства среды.
Перед разливом в стерильные чашки Петри обеспечьте равномерное распределение осадка висмут-сульфита в конечном геле.

Работа с образцами

Типы образцов: клинические образцы (фекалии), образцы мяса и пищевых продуктов, молоко и молочные продукты, корма для животных, фекалии животных, пробы окружающей среды.

Процедура:

Предварительное обогащение: Образцы (25 г в 225 мл) обогащают в буферной пептонной воде (M14941) при температуре 34–38 °C в течение 18 ± 2 ч.
Селективное обогащение: 0,1 мл предварительно обогащенного образца инокулируют в 10 мл бульона RVS (M14481) или агар MSRV (M1428) и инкубируют при 41,5 ± 1 °C в течение 24 ± 3 ч. Также 1 мл культуры инокулируют в бульон MKTT (M1496I) и инкубируют при 37 ± 1 °C в течение 24 ± 3 ч. Для S. Typhi и S. Paratyphi A используют бульон с селенистым цистином (инкубация при 37 ± 1 °C в течение 24 ± 3 ч и 48 ± 3 ч).
Изоляция: Полученную культуру высевают на висмут-сульфитный агар (BS) (M027) и инкубируют при 37 ± 1 °C в течение 24 ± 3 ч. Рекомендуется дополнительная инкубация еще на 24 ± 3 ч. Параллельно проводят посев на модифицированный агар XLD (M0311).
Подтверждение: Для подтверждения результатов проводят биохимические и серологические тесты.

Технические характеристики

Параметр	Значение
Происхождение компонентов	Животное
Тип продукта	Гранулированный
Физическая форма	Гранулы
Тип упаковки	ПНД (HDPE)
Цвет готовой среды	Желтовато-зеленый, опалесцирующий, с хлопьевидным осадком
pH (5,23% раствор при 25 °C)	7,7 ± 0,2
Диапазон pH	7,50–7,90
Желирование	Плотное (сопоставимо с 2,0% агаром)

Контроль качества и культуральные характеристики

Инкубация при 37 ± 1 °C в течение 24 ± 3 ч с дополнительной инкубацией еще на 24 ± 3 ч. Восстановление 100 % считается по росту на сое-казеиновом-пептонном агаре.

Организм	Посевная доза (КОЕ)	Рост	Восстановление	Цвет колонии
Продуктивность
Salmonella Typhimurium ATCC 14028	50–100	хороший	$\ge$ 50 %	Коричневые, серые или черные колонии, обычно с металлическим блеском через 24 ч, становятся равномерно черными через 48 ч.
Salmonella Enteritidis ATCC 13076	50–100	хороший	$\ge$ 50 %	Коричневые, серые или черные колонии, обычно с металлическим блеском через 24 ч, становясь равномерно черными через 48 ч.
Селективность и специфичность
Escherichia coli ATCC 8739	$\ge 10^4$	рост или частичное ингибирование		Тускло-зеленые или коричневые колонии без металлического блеска
Escherichia coli ATCC 25922	$\ge 10^4$	рост или частичное ингибирование		Тускло-зеленые или коричневые колонии без металлического блеска
Enterococcus faecalis ATCC 29212	$\ge 10^4$	ингибирован	0 %	-
Enterococcus faecalis ATCC 19433	$\ge 10^4$	ингибирован	0 %	-

Дополнительные тесты

Организм	Посевная доза (КОЕ)	Рост	Восстановление	Цвет колонии
Salmonella Typhi ATCC 6539	50–100	хороший	$\ge$ 50 %	Коричневые, серые или черные колонии, обычно с металлическим блеском через 24 ч, становясь равномерно черными через 48 ч.
Salmonella Paratyphi A ATCC 9150	50–100	хороший	$\ge$ 50 %	Коричневые, серые или черные колонии, обычно с металлическим блеском через 24 ч, становясь равномерно черными через 48 ч.

Условия эксплуатации и хранения

Хранение порошка: в плотно закрытом контейнере при температуре 10–30 °C в сухом вентилируемом месте. Из-за гигроскопичности продукта после вскрытия флакон необходимо плотно закрывать во избежание образования комков.
Хранение готовой среды: при температуре 20–30 °C.
Утилизация: использованные среды и материалы, контактировавшие с образцами, подлежат деконтаминации путем автоклавирования или сжигания в соответствии с лабораторными протоколами работы с инфекционными материалами.

Ограничения применения

Запрещено автоклавировать или перегревать среду, так как это уничтожает её селективные свойства.
S. Typhi и S. Arizonae могут образовывать типичные коричневые колонии с металлическим блеском или без него.
Высокая селективность среды требует её использования параллельно с менее селективными средами для полноценной изоляции.
При массивном посеве некоторых видов Salmonella могут наблюдаться типичные черные колонии с блеском, в то время как изолированные колонии могут выглядеть зелеными.