HiMedia M1062-100G Нейтрализующий бульон Дей-Энгли

Порошкообразная питательная среда HiMedia M1062-100G Нейтрализующий бульон Дей-Энгли для микробиологических исследований нейтрализует широкий спектр антисептиков и дезинфектантов. Среда предназначена для контроля бактерицидной активности дезинфицирующих средств в пищевых, молочных, экологических, косметических и фармацевтических образцах; из-за высокой концентрации лецитина мутность нельзя использовать как показатель роста.

Назначение

Нейтрализующий бульон Дей-Энгли HiMedia M1062-100G рекомендован для нейтрализации и тестирования антисептиков и дезинфицирующих средств, включая:

• четвертичные аммониевые соединения;
• фенольные соединения;
• препараты йода;
• препараты хлора;
• соединения ртути;
• формальдегид;
• глутаровый альдегид.

Среда особенно предназначена для отбора проб из объектов окружающей среды, когда нейтрализация химического вещества необходима для определения его бактерицидной активности.

Состав

Номинальный состав на 1 л:

Конечный pH при 25 °C: 7,6 ± 0,2.

Формула скорректирована и стандартизирована в соответствии с параметрами эффективности.

Принцип действия и интерпретация

Нейтрализующий бульон Дей-Энгли разработан по методике Engley и Dey. Среда содержит нейтрализующие компоненты для большинства действующих веществ, применяемых в составе антисептиков и дезинфицирующих средств.

Сильное бактериостатическое вещество подавляет рост и размножение бактерий, но не уничтожает их. При благоприятных условиях такие бактерии сохраняют способность вызывать инфекцию.

Нейтрализующий бульон Дей-Энгли и основа нейтрализующего бульона Дей-Энгли имеют одинаковую формулу, однако основа не содержит нейтрализующих компонентов.

Назначение компонентов:

• триптон служит источником азота и углерода, длинноцепочечных аминокислот, витаминов и других необходимых питательных веществ;
• декстроза является источником энергии;
• дрожжевой экстракт служит источником витаминов группы B;
• бисульфит натрия нейтрализует альдегиды;
• тиогликолят натрия нейтрализует соединения ртути;
• тиосульфат натрия нейтрализует йод и хлор;
• лецитин нейтрализует четвертичные аммониевые соединения;
• полисорбат 80 — неионогенное поверхностно-активное вещество — нейтрализует замещённые фенольные соединения;
• бромкрезоловый пурпурный является индикатором утилизации декстрозы.

Из-за высокой концентрации лецитина в бульонной среде мутность нельзя использовать для выявления роста. Поэтому в состав добавлены бромкрезоловый пурпурный и декстроза. Микроорганизмы, ферментирующие декстрозу, изменяют цвет среды с фиолетового на жёлтый. Рост видов Pseudomonas, не ферментирующих декстрозу, выявляют по образованию плёнки на поверхности бульона.

Приготовление среды

1. Суспендируйте 39,02 г порошка в 1000 мл очищенной или дистиллированной воды.
2. При необходимости нагревайте до полного растворения среды.
3. Тщательно перемешайте.
4. Разлейте среду в пробирки или колбы в требуемом объёме.
5. Стерилизуйте автоклавированием при давлении 15 фунтов, ориентировочно 0,10 МПа, при 121 °C в течение 15 мин.
6. Охладите среду до 45–50 °C.

Методика тестирования нейтрализации

Для испытания дезинфицирующего средства подготовьте два набора пробирок:

• первый набор содержит по 9 мл нейтрализующего бульона Дей-Энгли M1062;
• второй набор содержит по 9 мл основы нейтрализующего бульона Дей-Энгли M187.

Порядок проведения:

1. Добавьте в каждую пробирку 1 мл исследуемого дезинфицирующего средства.
2. Тщательно перемешайте.
3. Оставьте на 15 мин.
4. Внесите 0,1 мл ночной бульонной культуры, разведённой в соотношении 1:100 000.
5. Инкубируйте при 37 °C в течение 48 ч.
6. Оцените рост по изменению цвета среды с фиолетового на жёлтый или по образованию поверхностной плёнки.

Рост в нейтрализующем бульоне и отсутствие роста в основе нейтрализующего бульона указывают на нейтрализацию дезинфицирующего средства.

Для проверки бактерицидной активности перенесите материал из обеих пробирок на нейтрализующий агар D/E M186. Рост в пробирке с основой нейтрализующего бульона, в которой ранее отсутствовал рост, указывает на наличие бактериостатического вещества. Отсутствие роста указывает на бактерицидное действие дезинфицирующего средства. Во всех положительных пробирках должен наблюдаться рост на нейтрализующем агаре Дей-Энгли.

Контрольные дезинфицирующие средства, используемые в процедуре:

• 2 % хлора;
• 2 % формальдегида;
• 1 % глутарового альдегида;
• 2 % йода;
• 2 % фенола;
• четвертичные аммониевые соединения в разведении 1/750;
• соединения ртути в разведении 1/1000;
• другие аналогичные средства.

Исследуемые образцы

Типы образцов:

• пищевые образцы;
• молочные образцы;
• образцы окружающей среды;
• косметические образцы;
• фармацевтические образцы.

Отбор и обращение с образцами

Для пищевых и молочных образцов применяйте соответствующие методы отбора и обработки проб согласно установленным руководствам.

Для образцов окружающей среды применяйте соответствующие методы отбора и обработки проб согласно руководствам и местным стандартам.

После использования загрязнённые материалы необходимо стерилизовать автоклавированием перед утилизацией.

Меры предупреждения и предосторожности

• Перед открыванием контейнера ознакомьтесь с этикеткой.
• Используйте защитные перчатки, защитную одежду, средства защиты глаз и лица.
• При работе с образцами и культурами соблюдайте правила надлежащей микробиологической лабораторной практики.
• При обращении с образцами соблюдайте стандартные меры предосторожности, предусмотренные действующими руководствами.
• При необходимости обращайтесь к руководствам по безопасности, приведённым в соответствующих паспортах безопасности.

Ограничения

Из-за вариаций питательных потребностей некоторые штаммы могут демонстрировать слабый рост.

Контроль качества

Внешний вид

Однородный сыпучий порошок от светло-жёлтого до голубовато-серого цвета.

Цвет и прозрачность приготовленной среды

Раствор от фиолетового до красновато-фиолетового цвета, опалесцирующий, в пробирках; возможно наличие осадка в виде частиц.

Реакция

Реакция 3,9 % масс./об. водного раствора при 25 °C.

pH: 7,6 ± 0,2.

Диапазон pH

pH: 7,40–7,80.

Культуральные характеристики

Культуральные характеристики оценивают после инкубации при 35–37 °C в течение 40–48 ч.