HiMedia MS684A-50NO Транспортные тампоны HiCulture со средой Эймса (50 шт.)

Транспортные тампоны HiMedia MS684A-50NO HiCulture со средой Эймса (50 шт.) производства HiMedia — стерильная система для сбора и транспортировки образцов с 1,0 мл жидкой среды Эймса. Транспортные тампоны применяются для аэробных, анаэробных и требовательных к условиям культивирования микроорганизмов из образцов ран, кожи и зева; при невозможности немедленной обработки образцы хранят при 2–25 °C не более 48 ч.

Назначение и область применения

HiMedia MS684A-50NO предназначена для сбора и транспортировки клинических образцов в виде суспензии. Система рекомендована для образцов:

• ран;
• кожи;
• зева.

Образцы предназначены для транспортировки и последующего:

• бактериологического культивирования с применением стандартных лабораторных методов выделения и идентификации бактерий;
• прямого микроскопического исследования клинического материала;
• молекулярного скрининга;
• автоматизированной обработки.

Система рекомендована для аэробных, анаэробных и требовательных к условиям культивирования микроорганизмов.

Комплект и конструкция

В состав одной системы HiCulture входят:

• стерильная среда Эймса — 1,0 мл в пробирке;
• стерильный флокированный тампон PW1321 — 1 шт.

Среда находится в полипропиленовой пробирке с завинчивающейся крышкой и встроенным механизмом фиксации тампона.

Тампон PW1321 поставляется в стерильном пакете, вскрываемом отрывом. Тампон имеет:

• жёлтый стандартный флокированный наконечник;
• обычный стержень;
• красную обозначенную линию излома.

Сформированная линия излома позволяет сломать тампон внутри пробирки; отломанный тампон фиксируется в пробирке с транспортной средой. Если тампон слабо закреплён в крышке или пробирке, для его извлечения следует использовать стерильный пинцет.

Состав среды Эймса

Состав среды:

Конечное значение pH при 25 °C: 7,3 ± 0,2.

Формула скорректирована и стандартизирована в соответствии с параметрами рабочих характеристик.

Принцип действия

Транспортная среда обычно является непитательной восстановительной средой. Такая среда замедляет самоповреждающие ферментативные реакции внутри клеток и одновременно подавляет токсическое воздействие окислительных процессов.

Среда Эймса была разработана на основе транспортной среды Стюарта с заменой глицерофосфата на буфер на основе неорганического фосфата. Восстановительная среда формируется за счёт тиогликолята натрия и небольшого количества агара. Метиленовый синий в среде Эймса отсутствует.

Соли кальция, магния, калия и натрия способствуют сохранению гонококковых клеток за счёт ограничения их проницаемости. Фосфаты выполняют функцию буфера среды.

Первоначально транспортная среда была разработана в полутвёрдой форме Мoffett и Stuart для переноса образцов, содержащих гонококки. Cary и Blair выявили проблему чрезмерного роста загрязняющих микроорганизмов при транспортировке фекальных образцов, содержащих шигеллы. Было установлено, что загрязняющие микроорганизмы получают энергию из глицерофосфата, поэтому более подходящей заменой оказался буфер на основе неорганических солей.

Методика сбора образцов

1. Вскройте пакет со стороны, обозначенной стрелкой «Cut to open».
2. Извлеките из пакета отдельно стоящую полипропиленовую пробирку с завинчивающейся крышкой и стерильный тампон.
3. Соблюдайте асептические методы работы. Перед сбором клинического образца выполните гигиену рук и наденьте чистые перчатки.
4. Соберите образец у пациента стерильным тампоном в соответствии с типом материала.

Сбор образца из раны

Если рана закрыта повязкой, снимите повязку и перед сбором образца очистите рану стерильной водой или физиологическим раствором.

Собирайте образец из центра раны, а не с краёв, поскольку края могут быть загрязнены естественной микрофлорой наружных покровов кожи. Стерильным тампоном возьмите образец с поверхности раны пациента.

Сбор образца с кожи

Продезинфицируйте поверхность ожога, язвы или ссадины на коже спиртом, затем обработайте йодом или подходящим дезинфицирующим средством.

Удалите поверхностные загрязнения. Выполните соскоб основания узелка или язвы. При наличии экссудата соберите его шприцем или стерильным тампоном.

Сбор образца из зева

Попросите пациента открыть рот. Введите тампон в зев и тщательно проведите им по задней стенке глотки в области миндалин.

Помещение тампона в транспортную среду

5. После сбора образца снимите крышку и вставьте тампон в пробирку.
6. Осторожно сломайте тампон, согнув стержень по нанесённой линии излома.
7. Отломанную часть стержня поместите в пакет с маркировкой для биологически опасных отходов или утилизируйте с соблюдением соответствующих мер предосторожности.
8. Заверните крышку до упора, чтобы зафиксировать тампон в крышке. Убедитесь, что крышка плотно закрыта.
9. Запишите сведения о пациенте в предназначенном для этого поле на этикетке пробирки.
10. Доставьте образец в лабораторию для исследования.

Требования безопасности при сборе образцов

Клинические образцы следует рассматривать как биологически опасный материал. При сборе и работе с потенциально инфекционными образцами используйте подходящую защитную одежду.

При отламывании стержня тампона внутри пробирки с транспортной средой избегайте образования брызг и аэрозолей. При сборе образца тампоном не прикасайтесь к участку ниже красной нанесённой линии излома.

Предупреждения

• Только для диагностики in vitro.
• Перед вскрытием контейнера прочитайте инструкцию.
• Система должна использоваться только обученным квалифицированным персоналом, имеющим знания и навыки работы в микробиологической лаборатории.
• При работе можно руководствоваться требованиями безопасности, приведёнными в соответствующих паспортах безопасности.
• Внимательно прочитайте инструкцию-вкладыш и соблюдайте её требования.
• Используйте подходящие асептические методы.

Меры предосторожности и ограничения

• Все клинические образцы следует считать биологически опасными и обращаться с ними с осторожностью.
• Используйте соответствующие средства индивидуальной защиты.
• При работе с образцами и культурами соблюдайте правила надлежащей микробиологической практики.
• При обращении с клиническими образцами соблюдайте стандартные меры предосторожности в соответствии с установленными инструкциями.
• Не используйте систему после истечения срока годности, указанного на этикетке.
• Не используйте систему, если нарушена герметичность стерильного пакета.
• Флокированный тампон имеет насечку в определённом месте для облегчения излома после переноса наконечника в пробирку с транспортной средой.
• Если тампон не удерживается в фиксирующем элементе крышки, может потребоваться стерильный пинцет.
• Соблюдайте осторожность при извлечении тампона из пробирки.
• После использования простерилизуйте систему и утилизируйте её в соответствии с требованиями к обращению с биологически опасными отходами.
• Не допускайте проглатывания жидкой среды Эймса.
• Во время транспортировки системы избегайте экстремальных температур.
• Рабочие характеристики системы MS684A при хранении более 48 ч не оценивались.
• Совместное применение жидкой системы сбора и транспортировки HiMedia с другими коммерческими наборами и приборами для экспресс-диагностики необходимо предварительно валидировать на стороне пользователя.

Методика работы с образцом в лаборатории

Образец в пробирке следует тщательно встряхнуть или перемешать на вихревом смесителе, чтобы высвободить клетки с тампона и получить равномерную суспензию в жидкой среде.

Бактериологическое культивирование

1. Снимите крышку вместе с тампоном.
2. С помощью тампона нанесите материал на первый сектор чашки с агаризованной средой, прокатывая наконечник тампона для формирования первичного посева.
3. Если требуется засеять дополнительные чашки, верните тампон в пробирку на несколько секунд для повторного насыщения материалом.
4. Повторите штриховой посев на дополнительных чашках.

Для выделения и идентификации бактерий из клинических образцов, собранных тампоном, используйте рекомендованные питательные среды и методы в соответствии с опубликованными руководствами и лабораторными руководствами по микробиологии.

Рабочие характеристики и оценка эффективности

Рабочие характеристики тампонов жидкой системы сбора и транспортировки HiMedia определяются по процедурам, описанным в документе CLSI M40-A2.

В исследовании используют различные аэробные, анаэробные и требовательные к условиям культивирования микроорганизмы. Для оценки жизнеспособности бактерий применяют:

• метод перекатной чашки;
• метод элюирования с тампона.

Критерии приемлемости восстановления бактерий соответствуют рекомендациям CLSI M40-A2.

Для метода перекатной чашки жизнеспособность считают приемлемой при наличии более 5 КОЕ после установленного времени хранения для соответствующего разведения, которое даёт наиболее близкий к 300 КОЕ подсчёт на чашке в момент времени 0.

Для метода элюирования с тампона жизнеспособность считают приемлемой, если снижение количества бактерий не превышает 3 log₁₀ между подсчётом КОЕ в момент времени 0 и подсчётом