HiMedia MS2016A-50NO Транспортный тампон HiCulture с соево-казеиновой средой (50 шт.)

Транспортный тампон HiMedia MS2016A-50NO Транспортный тампон HiCulture с соево-казеиновой средой (50 шт.) содержит 2,0 мл стерильной соево-казеиновой переваренной среды с 6,5 % NaCl и стерильный флокированный тампон. Система предназначена для сбора и транспортировки клинических образцов в суспензии, включая образцы из носа, горла, подмышечной области, промежности и паховой области при скрининге на MRSA; образцы необходимо обработать как можно скорее, а при задержке — хранить при 2–25 °C не более 48 ч.

Назначение

Жидкая транспортная среда HiCulture предназначена для сбора и транспортировки образцов в виде суспензии. MS2016A содержит 2,0 мл соево-казеиновой переваренной среды (SCDM) с 6,5 % NaCl и один тампон для сбора и транспортировки аэробных, анаэробных и требовательных к условиям культивирования микроорганизмов из носа, горла, подмышечной области, промежности и паховой области при скрининге на метициллин-резистентный Staphylococcus aureus (MRSA).

Комплект поставки

Транспортная система состоит из следующих компонентов:

Конструкция и исполнение

Среда находится в полипропиленовой пробирке с завинчивающейся крышкой и встроенным механизмом фиксации тампона. Тампон поставляется в стерильном вскрываемом пакете.

Тампон имеет стерильный флокированный мини-наконечник, узкий стержень и красную насечку для отламывания. Сформированная зона излома позволяет отломить тампон внутри пробирки; наконечник фиксируется в пробирке с транспортной средой.

Если требуется извлечь тампон из пробирки или крышки, когда тампон неплотно закреплён в завинчивающейся крышке, следует использовать стерильный пинцет.

Состав среды

Состав, г/л:

• Конечный pH при 25 °C: 7,3 ± 0,2

Формула скорректирована и стандартизирована в соответствии с параметрами эффективности.

Типы образцов

Для скрининга на MRSA используют:

• мазок из носа;
• мазок из горла;
• мазок из подмышечной области;
• мазок из промежности;
• мазок из паховой области.

Методика сбора образца

Клинические образцы следует собирать и обрабатывать в соответствии с рекомендациями опубликованных протоколов.

1. Вскройте пакет со стороны, обозначенной стрелкой.
2. Извлеките из пакета самостоящую полипропиленовую пробирку с завинчивающейся крышкой и стерильный тампон.
3. Соблюдайте правила асептики во всех случаях, когда это применимо.
4. Соберите образец у пациента стерильным тампоном.
   1. Для сбора образца из носа введите флокированный тампон в ноздрю по направлению вверх и назад и выполните вращательное движение. Оставьте тампон на несколько секунд, затем медленно извлеките его вращательным движением.
   2. Для сбора образца из горла введите тампон в глотку. Попросите пациента открыть рот. Тщательно проведите тампоном по задней стенке горла вблизи миндалин.
   3. Аналогичным образом соберите образцы с поверхности подмышечной области, промежности и паховой области.
5. Снимите крышку и вставьте тампон в пробирку.
6. Осторожно отломите тампон, согнув его по нанесённой линии излома. Отломанную часть рукоятки выбросьте в пакет с маркировкой биологической опасности или соблюдайте соответствующие меры предосторожности.
7. Плотно завинтите крышку, чтобы зафиксировать тампон в крышке. Убедитесь, что крышка затянута.
8. Внесите сведения о пациенте в предусмотренное место на этикетке пробирки. Транспортируйте образец в лабораторию для исследования.

При сборе образца не касайтесь участка тампона ниже красной нанесённой линии излома.

Обработка образца в лаборатории

Для высвобождения клеток и получения равномерной суспензии вращайте пробирку на вихревом смесителе или тщательно встряхните тампон внутри пробирки. Образец в суспендированном виде можно использовать одним из следующих способов:

1. Бактериологическое культивирование. Используйте стандартные лабораторные методы выделения и идентификации бактерий.
   • Снимите крышку вместе с аппликатором тампона.
   • Аппликатором с тампоном нанесите материал на первый квадрант чашки с агаровой средой, прокатывая наконечник тампона для формирования первичного посева.
   • Если требуется использовать дополнительные чашки, верните тампон в пробирку на несколько секунд для повторного насыщения и повторите штриховой посев.
   • Для выбора рекомендуемых питательных сред и методик выделения и идентификации бактерий из клинических мазков следует обращаться к опубликованным руководствам и методическим рекомендациям по микробиологии.
2. Прямое микроскопическое исследование клинических образцов пациента.
3. Молекулярный скрининг образцов.
4. Автоматизированная обработка образцов.

Принцип действия и интерпретация

Основное назначение среды — поддерживать жизнеспособность микроорганизмов в период между сбором и исследованием образца.

Соево-казеиновая переваренная среда является средой общего назначения и поддерживает рост бактериальных видов. Для выделения MRSA, устойчивых к оксациллину, изучались среды Мюллера—Хинтона с добавлением 2 и 4 % хлорида натрия.

Традиционные методы скрининга на MRSA выявляют микроорганизмы за счёт подавления контаминирующей микрофлоры и отбора по устойчивости к антибиотикам. Обычно применяют прямой высев; при этом этап предварительного обогащения в жидкой среде перед высевом на чашку способствует лучшему восстановлению MRSA.

Стафилококки обладают способностью расти на средах с высоким содержанием соли. Поэтому высокая концентрация хлорида натрия в среде подавляет рост большинства обычных микроорганизмов, кроме стафилококков. После обогащения образец можно высевать непосредственно на селективную или хромогенную среду для прямой идентификации MRSA.

Штаммы MRSA называют гетерорезистентными, поскольку в одной культуре сосуществуют две субпопуляции. Устойчивая субпопуляция обычно растёт значительно медленнее чувствительной, что затрудняет выявление устойчивости традиционными методами определения чувствительности in vitro. Успешное выявление зависит от стимуляции роста устойчивой субпопуляции; этому способствуют более низкая температура, более длительная инкубация и присутствие соли в среде.

Методика оценки жизнеспособности

Характеристики эффективности жидкой системы сбора и транспортировки HiMedia определяют по процедурам, изложенным в документе CLSI M40-A2. В исследовании используют различные аэробные, анаэробные и требовательные к условиям культивирования микроорганизмы.

Для оценки жизнеспособности бактерий проводят:

• метод прокатывания тампона по поверхности чашки;
• метод элюции с тампона.

Критерии приемки восстановления бактерий применяют в соответствии с документом CLSI M40-A2.

Для метода прокатывания тампона жизнеспособность считают приемлемой, если после установленного времени хранения обнаруживается более 5 КОЕ из конкретного разведения, для которого число колоний на чашке в нулевой момент ближе всего к 300 КОЕ.

Для метода элюции с тампона жизнеспособность считают приемлемой, если снижение количества КОЕ между подсчётом в нулевой момент и подсчётом КОЕ для хранившихся тампонов составляет не более 3 log₁₀, то есть 1 × 10³ ± 10 %.

Ожидаемые характеристики достигаются при использовании продукта в соответствии с инструкцией и культивировании микроорганизмов в рекомендованных условиях инкубации.

Контроль качества

• Внешний вид: стерильная жидкая среда SCDM с 6,5 % NaCl в пробирках; стерильный флокированный тампон для сбора образца.
• Цвет: светло-жёлтая среда в пробирках.
• Объём среды: 2,0 мл в пробир