HiMedia KBM006-5KT Биохимический набор для подвижности Shigella HiMotility (5 наборов)

HiMedia·Арт.: 0048262·Арт. произв.: KBM006-5KT

HiMedia KBM006-5KT Биохимический набор для подвижности Shigella HiMotility (5 наборов)

Name: HiMedia KBM006-5KT Биохимический набор для подвижности Shigella HiMotility (5 наборов)
Brand: HiMedia
SKU: 0048262
Price: 9797 RUB
Availability: PreOrder

Под заказ9 797 руб.

Биохимический набор для подвижности Shigella HiMotility KBM006-5KT производства HiMedia (5 наборов). Предназначен для идентификации бактерий рода Shigella в соответствии со спецификацией IS 5887 Part VII.

Описание

Область применения

Набор KBM006 используется для скрининга проб пищевых продуктов, а также для анализа соответствующих клинических образцов и проб воды. Система позволяет идентифицировать виды S. flexneri, S. boydii, S. sonnei и S. dysenteriae.

Принцип измерения

Идентификация основана на использовании стандартизированной колориметрической системы тестов, определяющих подвижность микроорганизмов, утилизацию углеводов и другие биохимические свойства, специфичные для Shigella. Принцип работы базируется на изменении pH среды и использовании субстратов: в процессе инкубации метаболические изменения бактерий приводят к изменению цвета среды, что интерпретируется визуально или после добавления специфических реагентов.

Методика проведения анализа

Подготовка инокулята

Набор KBM006 нельзя использовать напрямую для анализа клинических или пищевых проб; микроорганизм должен быть предварительно изолирован и очищен.

Изолируйте микроорганизм на питательном агаре (с кровью или без).
Перенесите одну изолированную колонию в 5 мл питательного бульона.
Инкубируйте при температуре 35–37 °C в течение 6–8 часов до достижения мутности инокулята $\ge$ 1,0 OD при 620 нм. Примечание: при мутности инокулята менее 1,0 OD возможны ошибочные ложноотрицательные результаты.

Способ инокуляции

Асептически откройте набор, снимите защитную фольгу.
Выполните укольный посев в 1-ю лунку. Вторую лунку не инокулировать.
В остальные лунки (№ 3–12) внесите по одной петле инокулята методом укольного посева так, чтобы инокулят достиг дна лунок.

Инкубация

Температура: 35–37 °C.
Продолжительность: 24–48 часов.

Интерпретация результатов

Набор включает 12 биохимических тестов.

Тест на подвижность (Лунки № 1 и 2)

Среда: Питательный агар + TTC.

Положительная реакция: наблюдается перемещение роста из 1-й лунки во 2-ю, сопровождающееся покраснением среды.
Отрицательная реакция: покраснение только в 1-й лунке (вдоль линии укола).

Тест на индол (Лунка № 3)

Добавьте 1–2 капли реагента Ковакса (R008).

Положительная реакция: появление красно-розового окрашивания в течение 10 секунд.
Отрицательная реакция: реагент остается бледным.

Тест по Фогесу-Проскауэру (Лунка № 4)

Добавьте 2–3 капли реагента Барритта А (R029) и 1–2 капли реагента Барритта B (R030).

Положительная реакция: развитие розово-красного цвета в течение 5–10 минут.
Отрицательная реакция: отсутствие изменения цвета или слабый медный оттенок.

Тесты на утилизацию цитрата и малоната (Лунки № 5, 6)

Положительная реакция: изменение цвета среды на синий после инкубации.

Тесты на ферментацию углеводов (Лунки № 7–12)

Положительная реакция: изменение цвета среды с соломенного/светло-розового на темно-розовый (продукция кислоты).
Отрицательная реакция: среда сохраняет соломенный цвет.

Таблица интерпретации результатов HiMotility™ (KBM006)

Лунка №	Тест	Среда	Исходный цвет среды	Положительная реакция	Отрицательная реакция
1.	Подвижность	Питательный агар + TTC	Жёлтый	Жёлтый $\to$ красный в обеих лунках	Красный вдоль линии укола
2.	Подвижность
3.	Индол	Пептонная вода + агар	Бесцветный	Красно-розовый	Бесцветный
4.	Фогес-Проскауэр	Среда MRVP	Жёлтый	Эозин, розовый или красный цвет	Жёлтый
5.	Цитрат	Агар Симмонса	Зелёный	Синий	Зелёный
6.	Малонат	Агар с малонатом	Светло-зелёный	Синий	Светло-зелёный
7.	Глюкоза	Среда по IS 5887 (пептонная вода + индикатор Андраде + соответствующий углевод)	Соломенный $\to$ светло-розовый	Темно-розовый	Соломенный $\to$ светло-розовый
8.	Лактоза		Соломенный $\to$ светло-розовый	Темно-розовый	Соломенный $\to$ светло-розовый
9.	Маннит		Соломенный $\to$ светло-розовый	Темно-розовый	Соломенный $\to$ светло-розовый
10.	Сахароза		Соломенный $\to$ светло-розовый	Темно-розовый	Соломенный $\to$ светло-розовый
11.	Салицин		Соломенный $\to$ светло-розовый	Темно-розовый	Соломенный $\to$ светло-розовый
12.	Дульцит		Соломенный $\to$ светло-розовый	Темно-розовый	Соломенный $\to$ светло-розовый

Особенности интерпретации и эксплуатации

Важные примечания

Перед использованием реагенты должны быть доведены до комнатной температуры.
При слабой реакции в тестах на ферментацию углеводов результат фиксируется как « $\pm$ » и инкубация продлевается ещё на 24 часа. Соломенный цвет после 72 часов инкубации считается отрицательным результатом.
Возможны противоречивые результаты из-за мутаций микроорганизмов или влияния сред, использованных для изоляции и культивирования.

Меры предосторожности и утилизация

Образцы и культуры следует считать потенциально патогенными.
Соблюдайте строгие асептические условия при инокуляции.
Избегайте контакта реагентов с кожей и глазами. 3 % H₂O₂ является крайне едким раствором; при попадании на кожу немедленно промойте область 70 % этанолом (не водой) для нейтрализации действия.
После использования наборы и инструменты (пипетки, петли) подлежат дезинфекции с последующим сжиганием или автоклавированием в одноразовых пакетах.