HiMedia KBM006-10KT Биохимический набор для подвижности Shigella HiMotility (10 наборов)

HiMedia·Арт.: 0048260·Арт. произв.: KBM006-10KT

HiMedia KBM006-10KT Биохимический набор для подвижности Shigella HiMotility (10 наборов)

Name: HiMedia KBM006-10KT Биохимический набор для подвижности Shigella HiMotility (10 наборов)
Brand: HiMedia
SKU: 0048260
Price: 16708 RUB
Availability: PreOrder

Под заказ16 708 руб.

Биохимический набор для подвижности Shigella HiMotility KBM006-10KT производства HiMedia для идентификации бактерий рода Shigella согласно спецификации IS 5887 Part VII. Используется для скрининга проб пищевых продуктов, а также соответствующих клинических образцов и проб воды; включает 12 стандартизированных колориметрических тестов.

Описание

Принцип измерения

Набор основан на определении подвижности, утилизации углеводов и других биохимических свойств, специфичных для Shigella. В основе тестов лежит принцип изменения pH и использования субстратов: в процессе инкубации метаболические изменения микроорганизмов приводят к изменению цвета среды, что интерпретируется визуально или после добавления соответствующих реагентов.

Методика проведения анализа

Подготовка инокулята

Набор KBM006 не предназначен для прямого использования с клиническими или пищевыми образцами. Исследуемый микроорганизм должен быть предварительно изолирован и очищен.

Изолируйте микроорганизм на питательном агаре (с кровью или без).
Перенесите одну изолированную колонию в 5 мл питательного бульона.
Инкубируйте при температуре 35–37 °C в течение 6–8 часов до достижения мутности инокулята $\ge$ 1,0 OD при 620 нм. Примечание: при мутности инокулята менее 1,0 OD возможны ошибочные ложноотрицательные результаты.

Порядок инокуляции

Асептически откройте набор и снимите защитную фольгу.
Выполните укольный посев в 1-ю лунку. Вторую лунку не засеивайте.
Остальные лунки (с №3 по №12) засейте петлёй с инокулятом, выполняя укольный посев в каждую лунку. Инокулят должен достичь дна лунок.

Инкубация

Температура: 35–37 °C.
Продолжительность: 24–48 часов.

Интерпретация результатов

Подвижность (Лунки №1 и №2)

Среда: Питательный агар + TTC.

Положительная реакция: наблюдается перемещение роста из 1-й лунки во 2-ю, сопровождающееся покраснением среды.
Отрицательная реакция: покраснение только в 1-й лунке и в тех местах 2-й лунки, куда попал инокулят при посеве (вдоль линии укола).

Тест на индол (Лунка №3)

Добавьте 1–2 капли реагента Ковача (R008). Появление красно-розового цвета в течение 10 секунд указывает на положительную реакцию. Отсутствие изменения цвета (реагент остается бледно-желтым) — отрицательная реакция.

Тест Фогеса-Проскауэра (Лунка №4)

Добавьте 2–3 капли реагента Баритта А (R029) и 1–2 капли реагента Баритта Б (R030). Появление розово-красного цвета в течение 5–10 минут указывает на положительный результат. Отсутствие изменения цвета или слабый медный оттенок — отрицательная реакция.

Утилизация цитрата и маланона (Лунки №5, 6)

После инкубации изменение цвета среды на синий указывает на положительную реакцию.

Ферментация углеводов (Лунки №7–12)

Положительная реакция характеризуется изменением цвета среды с соломенного/светло-розового на темно-розовый (образование кислоты). Соломенный цвет указывает на отрицательную реакцию.

Таблица интерпретации результатов HiMotility™ (KBM006)

Лунка №	Тест	Среда	Исходный цвет среды	Положительная реакция	Отрицательная реакция
1.	Подвижность	Питательный агар + TTC	Жёлтый	Жёлтый $\rightarrow$ красный в обеих лунках	Красный вдоль линии укола
2.	Подвижность
3.	Индол	Пептонная вода + агар	Бесцветный	Красно-розовый	Бесцветный
4.	Фогес-Проскауэр	Среда MRVP	Жёлтый	Эозин, розовый или красный цвет	Жёлтый
5.	Цитрат	Агар Симмонса-цитрат	Зелёный	Синий	Зелёный
6.	Маланон	Агар с маланоном	Светло-зелёный	Синий	Светло-зелёный
7.	Глюкоза	Среда по IS 5887 (пептонная вода + индикатор Андраде + соответствующий углевод)	Соломенный $\rightarrow$ светло-розовый	Темно-розовый	Соломенный $\rightarrow$ светло-розовый
8.	Лактоза		Соломенный $\rightarrow$ светло-розовый	Темно-розовый	Соломенный $\rightarrow$ светло-розовый
9.	Маннит		Соломенный $\rightarrow$ светло-розовый	Темно-розовый	Соломенный $\rightarrow$ светло-розовый
10.	Сахароза		Соломенный $\rightarrow$ светло-розовый	Темно-розовый	Соломенный $\rightarrow$ светло-розовый
11.	Салицин		Соломенный $\rightarrow$ светло-розовый	Темно-розовый	Соломенный $\rightarrow$ светло-розовый
12.	Дульцит		Соломенный $\rightarrow$ светло-розовый	Темно-розовый	Соломенный $\rightarrow$ светло-розовый

Особенности интерпретации и эксплуатации

Важные примечания

Перед использованием выдержите реагенты при комнатной температуре.
При слабой реакции в тестах на ферментацию углеводов зафиксируйте результат как « $\pm$ » и инкубируйте пробу еще 24 часа. Соломенный цвет после 72 часов инкубации считается отрицательным результатом.
Возможны противоречивые результаты вследствие мутаций микроорганизмов или влияния сред, использованных для изоляции и культивирования.

Меры предосторожности и утилизация

Образцы и культуры следует считать потенциально патогенными.
Соблюдайте строгие асептические условия.
Избегайте контакта реагентов с кожей, глазами и одеждой. 3 % H₂O₂ является крайне едким раствором; при попадании на кожу немедленно промойте область 70 % этанолом (не водой) для нейтрализации действия.
После использования наборы и инструменты (пипетки, петли) должны быть дезинфицированы подходящим средством, после чего утилизированы путем сжигания или автоклавирования в одноразовых пакетах.