

HiMedia KBM005-10KT Биохимический набор для подвижности V. parahaemolyticus HiMotility (10 наборов)
Биохимический набор HiMedia KBM005-10KT HiMotility для идентификации Vibrio parahaemolyticus (10 наборов). Применяется для подтверждения вида V. parahaemolyticus в соответствии со спецификацией IS 5887 (часть V) на основе анализа подвижности и биохимических свойств.
Описание
Биохимический набор HiMedia KBM005-10KT HiMotility для идентификации Vibrio parahaemolyticus (10 наборов). Применяется для подтверждения вида V. parahaemolyticus в соответствии со спецификацией IS 5887 (часть V) на основе анализа подвижности и биохимических свойств.
Принцип измерения
Представители рода Vibrio являются грамотрицательными палочками, большинство из которых обладают подвижностью за счёт одного полярного жгутика при росте в жидкой среде. Большинство видов вырабатывают оксидазу и каталазу, а также ферментируют глюкозу без выделения газа.
Набор KBM005 представляет собой стандартизированную колориметрическую систему тестов, основанную на определении подвижности, утилизации углеводов и других специфических биохимических реакций. Принцип работы базируется на изменении pH среды и использовании субстратов: метаболические изменения V. parahaemolyticus приводят к изменению цвета среды, что интерпретируется визуально или после добавления специфических реагентов.
Область применения
Набор предназначен для анализа чистых изолятов, полученных из проб пищевых продуктов и воды. Может использоваться для скрининга образцов еды и соответствующих проб воды.
Состав набора
В один набор входят:
- Стрип с 12 лунками, содержащими стерильные среды для следующих тестов:
- Подвижность (первые две лунки);
- Тест Фогеса-Проскауэра (VP);
- Утилизация аргинина;
- Утилизация орнитина;
- Утилизация лизина;
- Каталазный тест;
- Продукция H₂S;
- Ферментация 4 углеводов: маннита, сахарозы, глюкозы и инозитола.
- Технический вкладыш.
- Индекс идентификации.
- Реагент Барритта A (R029) для VP-теста.
- Реагент Барритта B (R030) для VP-теста.
- Таблица интерпретации результатов и лист регистрации данных.
Методика проведения анализа
Подготовка инокулята
- Изолируйте и очистите целевой микроорганизм.
- Посейте культуру на питательный агар (M001) с кровью или без неё, либо на агар TCBS (M189).
- Перенесите одну изолированную колонию в 5 мл щелочной пептонной воды (M618).
- Инкубируйте при 35–37 °C в течение 6–8 часов до достижения мутности инокулята 1,0 OD при 620 нм.
Инокуляция набора
- Асептически откройте набор и снимите защитную фольгу.
- Выполните укольный посев в 1-ю лунку. Вторую лунку не инокулируйте.
- Остальные лунки (с 3-й по 12-ю) инокулируйте укольным методом, используя петлю с инокулятом. Петля должна достичь дна лунок.
Инкубация
- Температура: 35–37 °C.
- Продолжительность: 24–48 часов.
Интерпретация результатов
Результаты оцениваются согласно индексу идентификации. Реагенты в лунки №3 и №7 добавляются по окончании периода инкубации (через 18–24 часа).
Описание реакций по лункам
- Подвижность (лунки №1 и №2): Положительный результат характеризуется перемещением роста из 1-й лунки во 2-ю, что сопровождается покраснением среды (питательный агар + TTC).
- Тест Фогеса-Проскауэра (лунка №3): Добавьте 2–3 капли реагента Барритта A и 1 каплю реагента Барритта B. Положительная реакция — появление розово-красного цвета через 5–10 минут. Отсутствие изменения цвета или медный цвет — отрицательная реакция.
- Декарбоксилаза аминокислот (аргинин, орнитин, лизин; лунки №4, 5, 6): Положительная реакция — изменение цвета с оливково-зелёного на пурпурный. Отрицательная — изменение на жёлтый или отсутствие изменений.
- Каталаза (лунка №7): Снимите петлёй рост с поверхности 7-й лунки и погрузите в пробирку со свежеприготовленным 3 % раствором H₂O₂. Положительный результат — интенсивное выделение пузырьков (эффервесценция).
- Продукция H₂S (лунка №8): Положительная реакция — появление чёрного окрашивания среды после инкубации.
- Ферментация углеводов (лунки №9–12): Положительная реакция — изменение цвета среды с соломенного на светло-розовый вследствие продукции кислоты. Отрицательная — среда остаётся соломенного цвета.
Технические характеристики
Индекс идентификации V. parahaemolyticus
| № | Тест | V. parahaemolyticus |
|---|---|---|
| 1. | Подвижность | Подвижен |
| 2. | Подвижность | Подвижен |
| 3. | Фогес-Проскауэр | Отрицательный |
| 4. | Утилизация аргинина | Отрицательный |
| 5. | Утилизация орнитина | Положительный |
| 6. | Утилизация лизина | Положительный |
| 7. | Каталаза | Положительный |
| 8. | Продукция H₂S | Отрицательный |
| 9. | Ферментация маннита | Положительный |
| 10. | Ферментация сахарозы | Отрицательный |
| 11. | Ферментация глюкозы | Отрицательный |
| 12. | Ферментация инозитола | Отрицательный |
Таблица интерпретации результатов KBM005
| № | Тест | Реагенты после инкубации | Принцип | Исходный цвет среды | Положительная реакция | Отрицательная реакция |
|---|---|---|---|---|---|---|
| 1. | Подвижность | - | Подвижность | Светло-жёлтый / Жёлтый | Жёлтый красный в обеих лунках | Красный только вдоль линии укола |
| 2. | Подвижность | - | ||||
| 3. | Фогес-Проскауэр | 1–2 капли реагента Барритта A и 1–2 капли реагента Барритта B | Определение ацетоина | Светло-жёлтый / Жёлтый | Эозин, розовый или красный цвет | Жёлтый |
| 4. | Утилизация аргинина | - | Декарбоксилирование аминокислот | Оливково-зелёный светло-пурпурный | Пурпурный | Жёлтый |
| 5. | Утилизация орнитина | - | Декарбоксилирование аминокислот | Оливково-зелёный светло-пурпурный | Пурпурный | Жёлтый |
| 6. | Утилизация лизина | - | Декарбоксилирование аминокислот | Оливково-зелёный светло-пурпурный | Пурпурный | Жёлтый |
| 7. | Каталаза | - | Определение активности каталазы | Светло-жёлтый / Жёлтый | Пузырьки при добавлении H₂O₂ | Без пузырьков при добавлении H₂O₂ |
| 8. | Продукция H₂S | - | Определение продукции H₂S | Красный | Чёрный | Без почернения |
| 9. | Маннит | - | Ферментация маннита | Соломенный светло-розовый | Темно-розовый | Соломенный светло-розовый |
| 10. | Сахароза | - | Ферментация сахарозы | Соломенный светло-розовый | Темно-розовый | Соломенный светло-розовый |
| 11. | Глюкоза | - | Ферментация глюкозы | Соломенный светло-розовый | Темно-розовый | Соломенный светло-розовый |
| 12. | Инозитол | - | Ферментация инозитола | Соломенный светло-розовый | Темно-розовый | Соломенный светло-розовый |
Дополнительная информация
Необходимые материалы (не входят в комплект)
- Раствор H₂O₂ 3 %.
- Стандарт Макфарланда.
- Инокуляционные петли, пипетки.
- Обогатительные / изоляционные среды.
Ограничения и предостережения
- Реагенты перед использованием следует довести до комнатной температуры.
- При слабой реакции в тестах на ферментацию углеводов следует зафиксировать результат как «» и продолжить инкубацию до 48 часов. Оранжевый цвет через 48 часов считается отрицательным результатом.
- Ложноотрицательные результаты могут быть получены, если мутность инокулята составляет менее 0,1 OD.
- Набор нельзя использовать напрямую для анализа пищевых проб; требуется предварительное выделение чистой культуры на соответствующих средах.
Условия хранения и эксплуатации
- Хранение при температуре 2–8 °C.
- При работе соблюдать правила микробиологической безопасности, использовать средства индивидуальной защиты (перчатки, одежда, защита глаз и лица).
- Соблюдать строгие асептические условия при инокуляции.
Контроль качества
- Внешний вид: стерильный белый непрозрачный стрип с 12 лунками.
- Объем среды в каждой лунке: 0,8 мл.
- Стерильность: соответствует критериям выпуска.
Характеристики
Производитель/Серия
| Производитель | HiMedia |
|---|
Назначение изделия
| Назначение изделия | Среда |
|---|
Похожие товары
HiMedia · GRM046-25GHiMedia GRM046-25G L-Цистеина гидрохлорид моногидрат691 руб.
HiMedia · GRM077-500GHiMedia GRM077-500G D-(+)-глюкоза безводная, 99.5% (уп/500 гр)916 руб.
HiMedia · K016-1KTHiMedia K016-1KT Тестовый набор Rapid Hicoliform TM (1 набор)1 326 руб.
HACH · 2162315Среда Lauryl tryptoseпо запросу
HACH · 2323250Среда Presence-absence testпо запросу
HACH · 2494925Среда Presence-absence testпо запросу
