HiMedia KBM005-10KT Биохимический набор для подвижности V. parahaemolyticus HiMotility (10 наборов)
HiMediaHiMedia·Арт.: 0048257·Арт. произв.: KBM005-10KT

HiMedia KBM005-10KT Биохимический набор для подвижности V. parahaemolyticus HiMotility (10 наборов)

Под заказ16 683 руб.

Биохимический набор HiMedia KBM005-10KT HiMotility для идентификации Vibrio parahaemolyticus (10 наборов). Применяется для подтверждения вида V. parahaemolyticus в соответствии со спецификацией IS 5887 (часть V) на основе анализа подвижности и биохимических свойств.

Описание

Биохимический набор HiMedia KBM005-10KT HiMotility для идентификации Vibrio parahaemolyticus (10 наборов). Применяется для подтверждения вида V. parahaemolyticus в соответствии со спецификацией IS 5887 (часть V) на основе анализа подвижности и биохимических свойств.

Принцип измерения

Представители рода Vibrio являются грамотрицательными палочками, большинство из которых обладают подвижностью за счёт одного полярного жгутика при росте в жидкой среде. Большинство видов вырабатывают оксидазу и каталазу, а также ферментируют глюкозу без выделения газа.

Набор KBM005 представляет собой стандартизированную колориметрическую систему тестов, основанную на определении подвижности, утилизации углеводов и других специфических биохимических реакций. Принцип работы базируется на изменении pH среды и использовании субстратов: метаболические изменения V. parahaemolyticus приводят к изменению цвета среды, что интерпретируется визуально или после добавления специфических реагентов.

Область применения

Набор предназначен для анализа чистых изолятов, полученных из проб пищевых продуктов и воды. Может использоваться для скрининга образцов еды и соответствующих проб воды.

Состав набора

В один набор входят:

  • Стрип с 12 лунками, содержащими стерильные среды для следующих тестов:
    • Подвижность (первые две лунки);
    • Тест Фогеса-Проскауэра (VP);
    • Утилизация аргинина;
    • Утилизация орнитина;
    • Утилизация лизина;
    • Каталазный тест;
    • Продукция H₂S;
    • Ферментация 4 углеводов: маннита, сахарозы, глюкозы и инозитола.
  • Технический вкладыш.
  • Индекс идентификации.
  • Реагент Барритта A (R029) для VP-теста.
  • Реагент Барритта B (R030) для VP-теста.
  • Таблица интерпретации результатов и лист регистрации данных.

Методика проведения анализа

Подготовка инокулята

  1. Изолируйте и очистите целевой микроорганизм.
  2. Посейте культуру на питательный агар (M001) с кровью или без неё, либо на агар TCBS (M189).
  3. Перенесите одну изолированную колонию в 5 мл щелочной пептонной воды (M618).
  4. Инкубируйте при 35–37 °C в течение 6–8 часов до достижения мутности инокулята \ge1,0 OD при 620 нм.

Инокуляция набора

  1. Асептически откройте набор и снимите защитную фольгу.
  2. Выполните укольный посев в 1-ю лунку. Вторую лунку не инокулируйте.
  3. Остальные лунки (с 3-й по 12-ю) инокулируйте укольным методом, используя петлю с инокулятом. Петля должна достичь дна лунок.

Инкубация

  • Температура: 35–37 °C.
  • Продолжительность: 24–48 часов.

Интерпретация результатов

Результаты оцениваются согласно индексу идентификации. Реагенты в лунки №3 и №7 добавляются по окончании периода инкубации (через 18–24 часа).

Описание реакций по лункам

  • Подвижность (лунки №1 и №2): Положительный результат характеризуется перемещением роста из 1-й лунки во 2-ю, что сопровождается покраснением среды (питательный агар + TTC).
  • Тест Фогеса-Проскауэра (лунка №3): Добавьте 2–3 капли реагента Барритта A и 1 каплю реагента Барритта B. Положительная реакция — появление розово-красного цвета через 5–10 минут. Отсутствие изменения цвета или медный цвет — отрицательная реакция.
  • Декарбоксилаза аминокислот (аргинин, орнитин, лизин; лунки №4, 5, 6): Положительная реакция — изменение цвета с оливково-зелёного на пурпурный. Отрицательная — изменение на жёлтый или отсутствие изменений.
  • Каталаза (лунка №7): Снимите петлёй рост с поверхности 7-й лунки и погрузите в пробирку со свежеприготовленным 3 % раствором H₂O₂. Положительный результат — интенсивное выделение пузырьков (эффервесценция).
  • Продукция H₂S (лунка №8): Положительная реакция — появление чёрного окрашивания среды после инкубации.
  • Ферментация углеводов (лунки №9–12): Положительная реакция — изменение цвета среды с соломенного на светло-розовый вследствие продукции кислоты. Отрицательная — среда остаётся соломенного цвета.

Технические характеристики

Индекс идентификации V. parahaemolyticus

ТестV. parahaemolyticus
1.ПодвижностьПодвижен
2.ПодвижностьПодвижен
3.Фогес-ПроскауэрОтрицательный
4.Утилизация аргининаОтрицательный
5.Утилизация орнитинаПоложительный
6.Утилизация лизинаПоложительный
7.КаталазаПоложительный
8.Продукция H₂SОтрицательный
9.Ферментация маннитаПоложительный
10.Ферментация сахарозыОтрицательный
11.Ферментация глюкозыОтрицательный
12.Ферментация инозитолаОтрицательный

Таблица интерпретации результатов KBM005

ТестРеагенты после инкубацииПринципИсходный цвет средыПоложительная реакцияОтрицательная реакция
1.Подвижность-ПодвижностьСветло-жёлтый / ЖёлтыйЖёлтый \to красный в обеих лункахКрасный только вдоль линии укола
2.Подвижность-
3.Фогес-Проскауэр1–2 капли реагента Барритта A и 1–2 капли реагента Барритта BОпределение ацетоинаСветло-жёлтый / ЖёлтыйЭозин, розовый или красный цветЖёлтый
4.Утилизация аргинина-Декарбоксилирование аминокислотОливково-зелёный \to светло-пурпурныйПурпурныйЖёлтый
5.Утилизация орнитина-Декарбоксилирование аминокислотОливково-зелёный \to светло-пурпурныйПурпурныйЖёлтый
6.Утилизация лизина-Декарбоксилирование аминокислотОливково-зелёный \to светло-пурпурныйПурпурныйЖёлтый
7.Каталаза-Определение активности каталазыСветло-жёлтый / ЖёлтыйПузырьки при добавлении H₂O₂Без пузырьков при добавлении H₂O₂
8.Продукция H₂S-Определение продукции H₂SКрасныйЧёрныйБез почернения
9.Маннит-Ферментация маннитаСоломенный \to светло-розовыйТемно-розовыйСоломенный \to светло-розовый
10.Сахароза-Ферментация сахарозыСоломенный \to светло-розовыйТемно-розовыйСоломенный \to светло-розовый
11.Глюкоза-Ферментация глюкозыСоломенный \to светло-розовыйТемно-розовыйСоломенный \to светло-розовый
12.Инозитол-Ферментация инозитолаСоломенный \to светло-розовыйТемно-розовыйСоломенный \to светло-розовый

Дополнительная информация

Необходимые материалы (не входят в комплект)

  • Раствор H₂O₂ 3 %.
  • Стандарт Макфарланда.
  • Инокуляционные петли, пипетки.
  • Обогатительные / изоляционные среды.

Ограничения и предостережения

  • Реагенты перед использованием следует довести до комнатной температуры.
  • При слабой реакции в тестах на ферментацию углеводов следует зафиксировать результат как «±\pm» и продолжить инкубацию до 48 часов. Оранжевый цвет через 48 часов считается отрицательным результатом.
  • Ложноотрицательные результаты могут быть получены, если мутность инокулята составляет менее 0,1 OD.
  • Набор нельзя использовать напрямую для анализа пищевых проб; требуется предварительное выделение чистой культуры на соответствующих средах.

Условия хранения и эксплуатации

  • Хранение при температуре 2–8 °C.
  • При работе соблюдать правила микробиологической безопасности, использовать средства индивидуальной защиты (перчатки, одежда, защита глаз и лица).
  • Соблюдать строгие асептические условия при инокуляции.

Контроль качества

  • Внешний вид: стерильный белый непрозрачный стрип с 12 лунками.
  • Объем среды в каждой лунке: 0,8 мл.
  • Стерильность: соответствует критериям выпуска.

Характеристики

Производитель/Серия

ПроизводительHiMedia

Назначение изделия

Назначение изделияСреда

Похожие товары

Запросить коммерческое предложение