HiMedia KB014-20KT Набор для идентификации Acinetobacter HiAcinetobacter (20 наборов)

Набор для идентификации HiMedia KB014-20KT Набор для идентификации Acinetobacter HiAcinetobacter (20 наборов) — стандартизированная колориметрическая система с 24 биохимическими тестами. Набор предназначен для идентификации выделенных чистых культур Acinetobacter по реакциям утилизации субстратов и изменениям pH, но не используется непосредственно с клиническими образцами.

Назначение и идентификация

Система предназначена для идентификации микроорганизмов рода Acinetobacter по результатам 24 биохимических тестов: 12 тестов в части A и 12 тестов в части B. В состав входят тесты группы IMVIC, ферментации углеводов, гидролиза аминокислот и другие биохимические реакции.

Полный перечень организмов, которые можно идентифицировать с помощью системы, приведён в идентификационном индексе, входящем в комплект.

Принцип идентификации

KB014 представляет собой стандартизированную колориметрическую систему, использующую 24 традиционных биохимических теста. Тесты основаны на изменении pH и утилизации субстратов.

При инкубации микроорганизмы претерпевают метаболические изменения, которые проявляются изменением цвета среды. Изменение цвета может быть видимым непосредственно или проявляться после добавления реагента.

Требования к образцам

Набор нельзя использовать непосредственно для исследования клинических образцов. Микроорганизмы, подлежащие идентификации, необходимо предварительно выделить на подходящей изоляционной среде. Для анализа используют только чистые культуры.

Подготовка инокулята

1. Выделите исследуемый организм на стандартной среде, например на питательном агаре (M001) или соево-казеиновой агаровой среде (M290).
2. Отберите одну изолированную колонию, внесите её в 5 мл бульона на основе мозгово-сердечной инфузии и инкубируйте при 37 °C в течение 4–6 ч, пока мутность инокулята не достигнет 0,10 D при 620 нм или значения, соответствующего стандарту 0,5 Мак-Фарланда.
3. Для некоторых требовательных микроорганизмов может потребоваться инкубация более 6 ч. В таком случае продолжайте инкубацию до достижения мутности инокулята 0,10 D при 620 нм.

Альтернативный способ подготовки инокулята:

1. Отберите 1–3 хорошо изолированные колонии.
2. Приготовьте однородную суспензию в 2–3 мл стерильного физиологического раствора.
3. Плотность суспензии должна соответствовать 0,10 D при 620 нм.

При мутности инокулята менее 0,1 оптической плотности возможно получение ошибочных ложноотрицательных результатов. Более выраженные реакции получают при использовании обогащённой культуры вместо суспензии.

Внесение инокулята в полоску

1. Вскройте набор с соблюдением асептических условий.
2. Внесите в каждую лунку по 50 мкл подготовленного инокулята методом поверхностного посева.
3. В качестве альтернативы полоску можно инокулировать прокалыванием каждой отдельной лунки петлёй с инокулятом.

Инкубация

• Температура инкубации: 35–37 °C.
• Продолжительность инкубации: 18–24 ч.

Интерпретация результатов

Результаты интерпретируют в соответствии с критериями, приведёнными в таблице интерпретации результатов.

Реагенты в лунки № 1, 2, 7 и 10 части A добавляют в конце периода инкубации, то есть через 18–24 ч.

Биохимические реакции, часть A

Тесты ферментации углеводов, часть B

Важные условия интерпретации

1. После извлечения из холодильника доведите реагенты до комнатной температуры.
2. В тестах ферментации углеводов некоторые микроорганизмы могут давать слабую реакцию. В таком случае зарегистрируйте реакцию как положительную (+) и продолжите инкубацию ещё 48 ч. Оранжевый цвет после 48 ч инкубации интерпретируют как отрицательную реакцию.
3. Иногда микроорганизмы дают противоречивые результаты вследствие мутации либо из-за особенностей среды, использованной для выделения, культивирования и поддержания культуры.
4. Идентификационный индекс составлен на основе стандартных источников и результатов тестов, проведённых в лаборатории.

Меры предосторожности

• Клинические образцы и микробные культуры следует считать потенциально патогенными и обращаться с ними соответствующим образом.
• При инокуляции и работе с полосками необходимо соблюдать асептические условия.
• Не допускайте контакта реагентов с кожей, глазами и одеждой.

Утилизация

После использования полоски, а также инструменты, применявшиеся для выделения и инокуляции, включая пипетки и петли, необходимо обработать подходящим дезинфицирующим средством, затем утилизировать сжиганием или автоклавированием в пакете для утилизации.

Комплект поставки