

HiMedia KB014-10KT Набор для идентификации Acinetobacter HiAcinetobacter (10 наборов)
Набор для идентификации Acinetobacter HiAcinetobacter KB014-10KT производства HiMedia, включающий 24 биохимических теста. Система предназначена для дифференциации микроорганизмов рода Acinetobacter на основе анализа метаболических свойств; в одном наборе содержится материалов для проведения 10 тестов.
Описание
Набор для идентификации Acinetobacter HiAcinetobacter KB014-10KT производства HiMedia, включающий 24 биохимических теста. Система предназначена для дифференциации микроорганизмов рода Acinetobacter на основе анализа метаболических свойств; в одном наборе содержится материалов для проведения 10 тестов.
Принцип измерения
Система KB014 представляет собой стандартизированную колориметрическую систему идентификации. В основе метода лежит определение способности микроорганизмов использовать определенные субстраты и изменять pH среды. В процессе инкубации метаболические изменения проявляются в виде изменения цвета среды, которое может происходить спонтанно или после добавления специфических реагентов.
Область применения
Набор используется для идентификации чистых культур бактерий. Система не предназначена для прямого анализа клинических образцов; предварительно микроорганизмы должны быть изолированы на соответствующих селективных или дифференциальных средах.
Методика проведения анализа
Подготовка инокулята
- Изолируйте исследуемый микроорганизм на стандартной среде, например, на питательном агаре (M001) или агаре с соевым казеином (M290).
- Перенесите одну изолированную колонию в 5 мл бульона Brain Heart Infusion (BHI).
- Инкубируйте при 37 °C в течение 4–6 часов до достижения мутности 0,1 OD при 620 нм или 0,5 по стандарту МакФарланда. Для требовательных организмов время инкубации может превысить 6 часов.
- Альтернативный метод: приготовьте гомогенную суспензию 1–3 изолированных колоний в 2–3 мл стерильного физиологического раствора с плотностью 0,1 OD при 620 нм.
Важно: При плотности инокулята ниже 0,1 OD возможны ложноотрицательные результаты. Использование обогащенной культуры вместо суспензии делает результаты более выраженными.
Инокуляция и инкубация
- В асептических условиях откройте набор.
- Внесите по 50 мкл подготовленного инокулята в каждую лунку методом поверхностного посева.
- Альтернативно возможен посев путем прокалывания каждой лунки петлёй с инокулятом.
- Инкубируйте стрип при температуре 35–37 °C в течение 18–24 часов.
Интерпретация результатов
Результаты оцениваются согласно таблицам интерпретации. Реагенты в лунки № 1, 2, 7 и 10 части А добавляются строго по окончании периода инкубации (через 18–24 часа).
Особенности интерпретации части А:
- Индол: Добавить 1–2 капли реагента Ковача. Положительный результат — появление красно-розового окрашивания в течение 10 секунд.
- Фогес-Проскапер: Добавить 2–3 капли реагента Баритта А и 1–2 капли реагента Баритта Б. Положительный результат — красно-розовый цвет через 5–10 минут.
- Нитратредукция: Добавить 1–2 капли сульфаниловой кислоты и 1–2 капли раствора -нафтиламина. Положительный результат — розово-красный цвет.
- Деаминирование фенилаланина: Добавить 2–3 капли реагента TDA. Положительный результат — зеленый цвет.
Особенности интерпретации части Б (ферментация углеводов):
- Положительная реакция характеризуется изменением цвета среды с красного на желтый вследствие продукции кислоты.
- При слабой реакции результат фиксируется как «+», и инкубация продлевается до 48 часов. Оранжевый цвет через 48 часов интерпретируется как отрицательная реакция.
Технические характеристики
Биохимические реакции части А
| Лунка № | Тест | Реагенты после инкубации | Принцип | Исходный цвет среды | Положительная реакция | Отрицательная реакция |
|---|---|---|---|---|---|---|
| 1 | Индол | 1–2 капли реагента Ковача | Деаминирование триптофана | Бесцветный | Красно-розовый | Бесцветный |
| 2 | Фогес-Проскапер | 1–2 капли реагента Баритта А и 1–2 капли реагента Баритта Б | Продукция ацетоина | Бесцветный | Розово-красный | Бесцветный / слабый медный |
| 3 | Утилизация цитрата | — | Использование цитрата как единственного источника углерода | Желтовато-зеленый | Синий | Желтовато-зеленый |
| 4 | Утилизация лизина | — | Декарбоксилирование лизина | Оливково-зеленый | Пурпурный | Желтый |
| 5 | Утилизация орнитина | — | Декарбоксилирование орнитина | Оливково-зеленый | Пурпурный | Желтый |
| 6 | Утилизация аргинина | — | Декарбоксилирование аргинина | Оливково-зеленый | Пурпурный | Желтый |
| 7 | Нитратредукция | 1–2 капли сульфаниловой кислоты и 1–2 капли раствора -нафтиламина | Восстановление нитратов | Бесцветный | Розово-красный | Бесцветный |
| 8 | Малонат | — | Использование малоната натрия как единственного источника углерода | Светло-зеленый | Синий | Светло-зеленый |
| 9 | Уреаза | — | Уреазная активность | Оранжево-желтый | Розовый | Оранжево-желтый |
| 10 | Деаминирование фенилаланина | 2–3 капли реагента TDA | Деаминирующая активность фенилаланина | Бесцветный | Зеленый | Бесцветный |
| 11 | Продукция H₂S | — | Продукция сероводорода | Оранжево-желтый | Черный | Оранжево-желтый |
| 12 | ONPG | — | -галактозидазная активность | Бесцветный | Желтый | Бесцветный |
Интерпретация результатов части Б (ферментация углеводов)
| Лунка № | Тест | Реагенты после инкубации | Принцип | Исходный цвет среды | Положительная реакция | Отрицательная реакция |
|---|---|---|---|---|---|---|
| 1 | Глюкоза | — | Утилизация глюкозы | Красный | Желтый | Красный / Розовый |
| 2 | Маннит | — | Утилизация маннита | Красный | Желтый | Красный / Розовый |
| 3 | Ксилоза | — | Утилизация ксилозы | Красный | Желтый | Красный / Розовый |
| 4 | Инозитол | — | Утилизация инозитола | Красный | Желтый | Красный / Розовый |
| 5 | Сорбитол | — | Утилизация сорбитола | Красный | Желтый | Красный / Розовый |
| 6 | Рамноза | — | Утилизация рамнозы | Красный | Желтый | Красный / Розовый |
| 7 | Сахароза | — | Утилизация сахарозы | Красный | Желтый | Красный / Розовый |
| 8 | Лактоза | — | Утилизация лактозы | Красный | Желтый | Красный / Розовый |
| 9 | Арабиноза | — | Утилизация арабинозы | Красный | Желтый | Красный / Розовый |
| 10 | Адонит | — | Утилизация адонита | Красный | Желтый | Красный / Розовый |
| 11 | Раффиноза | — | Утилизация раффинозы | Красный | Желтый | Красный / Розовый |
| 12 | Салицин | — | Утилизация салицина | Красный | Желтый | Красный / Розовый |
Комплект поставки
- Стрипы KB014 (10 шт.)
- Технический вкладыш
- Таблица интерпретации результатов и лист записи данных
- Индекс идентификации
- Реагент Ковача (R008)
- Реагент Баритта А (R029)
- Реагент Баритта Б (R030)
- Реагент TDA (R036)
- Раствор -нафтиламина (R009)
- Сульфаниловая кислота, 0,8 % (R015)
Условия эксплуатации и хранения
- Температура хранения: 2–8 °C.
- Срок годности: 12 месяцев.
- Перед использованием реагенты должны быть доведены до комнатной температуры.
Меры предосторожности и утилизация
- Все клинические образцы и культуры следует считать потенциально патогенными.
- Соблюдайте строгие асептические условия при инокуляции и работе со стрипами.
- Избегайте контакта реагентов с кожей, глазами и одеждой.
- После использования стрипы и инструменты (пипетки, петли) подлежат дезинфекции с последующим уничтожением путем сжигания или автоклавирования в специальных пакетах для утилизации.
Характеристики
Производитель/Серия
| Производитель | HiMedia |
|---|
Назначение изделия
| Назначение изделия | Среда |
|---|
Похожие товары
HiMedia · GRM046-25GHiMedia GRM046-25G L-Цистеина гидрохлорид моногидрат691 руб.
HiMedia · GRM077-500GHiMedia GRM077-500G D-(+)-глюкоза безводная, 99.5% (уп/500 гр)916 руб.
HiMedia · K016-1KTHiMedia K016-1KT Тестовый набор Rapid Hicoliform TM (1 набор)1 326 руб.
HACH · 2162315Среда Lauryl tryptoseпо запросу
HACH · 2323250Среда Presence-absence testпо запросу
HACH · 2494925Среда Presence-absence testпо запросу
