HiMedia KB008-10KT Набор для идентификации Neisseria HiNeisseria (10 наборов)

Набор для микробиологической идентификации HiMedia KB008-10KT Набор для идентификации Neisseria HiNeisseria (10 наборов) представляет собой стандартизированную систему из 12 биохимических тестов для чистых изолятов. Набор предназначен для идентификации видов Neisseria из клинических образцов и валидации известных лабораторных штаммов; прямое исследование клинических образцов не допускается.

Идентификация изделия

Назначение

KB008 — комбинация из 12 тестов для идентификации видов Neisseria из клинических образцов с использованием чистого изолята. Набор также может применяться для валидации известных лабораторных штаммов.

Принцип идентификации

Каждый набор KB008 представляет собой стандартизированную колориметрическую систему идентификации, включающую шесть традиционных биохимических тестов и шесть тестов утилизации углеводов. Тесты основаны на изменении pH и утилизации субстратов. Во время инкубации микроорганизмы претерпевают метаболические изменения, которые проявляются изменением цвета среды — спонтанно или после добавления реагента.

Состав набора

1. В каждый набор входит материал для выполнения 5, 10 или 20 тестов KB008 в зависимости от комплектации — 5, 10 или 20 наборов соответственно. Набор содержит стерильные среды для определения уреазы, ONPG, реакции Вогеса—Проскауэра, оксидазы, каталазы, восстановления нитратов, а также утилизации глюкозы, мальтозы, лактозы, сахарозы, фруктозы и маннозы.
2. Сульфаниловая кислота 0,8 % (R015) для теста на восстановление нитратов.
3. Реагент N,N-диметил-1-нафтиламина (R009) для теста на восстановление нитратов.
4. Реагент Барритта A (R029) для теста Вогеса—Проскауэра.
5. Реагент Барритта B (R030) для теста Вогеса—Проскауэра.
6. Реагент Гордона—Маклеода (R026) для теста на оксидазу.
7. Таблица интерпретации результатов и рабочий лист для внесения результатов.
8. Индекс идентификации.
9. Техническая инструкция к продукту.

Материал и оборудование, не входящие в комплект

1. Стандарт мутности Мак-Фарланда.
2. Инокуляционные петли и пипетки.
3. Обогатительная или изолирующая питательная среда.

Тип образца

Чистый изолят, полученный из клинического образца.

Пробоподготовка и подготовка инокулята

Подготовка инокулята

1. Выделите идентифицируемый микроорганизм на селективной среде, например на основе среды Thayer Martin (M413) или на шоколадном агаре (M103).
2. Отберите одну изолированную колонию и внесите её в 5 мл бульона BHI (M210).
3. Инкубируйте при 35–37 °C в атмосфере с содержанием CO₂ 5–10 % и относительной влажностью 70 % в течение 4–6 ч, пока плотность инокулята не достигнет оптической плотности не менее 0,1 при 620 нм или значения 0,5 по стандарту Мак-Фарланда.

Методика проведения анализа

Внесение инокулята в набор

1. Вскройте набор в асептических условиях. Снимите герметизирующую фольгу.
2. Внесите в каждую лунку по 50 мкл подготовленного инокулята методом поверхностного посева.
3. В качестве альтернативы набор можно инокулировать прокалыванием каждой отдельной лунки инокуляционной петлёй с одной порцией инокулята.

Инкубация

• Температура инкубации: 35–37 °C.
• Атмосфера: CO₂ 5–10 %.
• Относительная влажность: 70 %.
• Продолжительность инкубации: 18–24 ч.

Интерпретация результатов

Интерпретируйте результаты в соответствии с критериями, приведёнными в таблице интерпретации результатов. Реагенты в лунки № 3, 4, 5 и 6 следует добавлять в конце периода инкубации, то есть через 18–48 ч.

Контроль качества

Внешний вид

Стерильная непрозрачная белая полоска с 12 лунками, содержащими среды для определения уреазы, ONPG, реакции Вогеса—Проскауэра, оксидазы, каталазы, восстановления нитратов, а также утилизации глюкозы, мальтозы, лактозы, сахарозы, фруктозы и маннозы.

Количество среды

Количество среды в каждой лунке: 0,8 мл.

Проверка стерильности

Соответствует критериям выпуска.

Тест 1: уреаза, лунка № 1

• Положительный результат: изменение цвета на розовый.
• Отрицательная реакция: цвет не изменяется.

Тест 2: ONPG, лунка № 2

• Положительный результат: среда изменяет цвет с бесцветного на жёлтый.
• Отрицательная реакция: среда остаётся бесцветной.

Тест 3: реакция Вогеса—Проскауэра, лунка № 3

1. Добавьте 2–3 капли реагента Барритта A (R029) и 1 каплю реагента Барритта B (R030).
2. Положительный результат: появление розовато-красного окрашивания через 5–10 мин.
3. Отрицательная реакция: отсутствие изменения цвета или медное окрашивание, обусловленное реакцией реагентов A и B.

Тест 4: оксидаза, лунка № 4

1. Добавьте 1–2 капли реагента Гордона—Маклеода (R026).
2. Положительный результат: изменение цвета с бесцветного на тёмно-фиолетовый в течение 10 с.
3. Отрицательная реакция: бесцветная среда через 60 с.

Тест 5: каталаза, лунка № 5

1. Добавьте 2–3 капли реагента перекиси водорода.
2. Положительный результат: появление пузырьков газа.
3. Отрицательная реакция: пузырьки газа не образуются.

Тест 6: восстановление нитратов, лунка № 6

1. Добавьте 1–2 капли сульфаниловой кислоты (R015) и 1–2 капли реагента N,N-диметил-1-нафтиламина (R009).
2. Положительный результат: немедленное появление розовато-красного окрашивания после добавления реагентов.
3. Отрицательная реакция: цвет не изменяется.

Тесты 7–12: ферментация углеводов, лунки № 7–12

• Положительный результат: изменение цвета на жёлтый.
• Отрицательная реакция: красное окрашивание или отсутствие изменения цвета.

Таблица интерпретации результатов

Рабочий лист для внесения результатов

| № | Тест | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 | 9 | 10 | | --- | --- | --- | --- | ---